检验标本正确采集方法与临_床的沟通.ppt

感谢您的关注！！！ 1.3采取最合乎要求的样本 (1)抗凝剂的正确使用：根据检验要求选择抗凝剂的种类，抗凝剂与样本的比例必须正确无误。 (2)防溶血、防污染：溶血对生化检测血钾、ALT、AST、LDH、TBIL、DBIL等结果产生正干扰，对Na、Cl、Ca等结果产生负干扰；血气分析和厌氧菌培养需防止接触空气；细菌培养时避免非病原菌的污染。 (3)防止过失性的采样：避免输液侧抽血作K、Na、GLU等测定。 1.4 标本的唯一性标志 (1)不同的检验项目用不同的真空管。 (2)标本容器上应注明： ●送检科别及床号； ●患者姓名及病历号； ●全院联网后加条形码; ●采样时间。 2、血标本的正确采集（具体见抗凝剂的正确使用） 3、大、小便标本采集 3.1尿标本留取 　　尿标本以晨尿为佳．检测尿道感染应留取前段晨 尿；检测前列腺感染应留取少量后段晨尿。 　　检测尿路结石，留取疼痛时的尿为好；尿淀粉酶 测定应留取疼痛发作后３-４h尿液。 3.2便标本的采集 　　便常规标本，应留取有病理改变的部分，如留有 黏液、脓血和稀水样标本送检． 　　如：检测蛲虫卵，因粪检出阳性率极低，应在患 者入睡后２h，用棉拭子在肛门皱壁上蘸取或用透明胶 粘取标本。 4.细菌标本的采集 细菌标本的采集应在抗生素使用前或停药一周后，如果不能停用，应在下次使用前采集。 细菌标本切勿使用物流传递，必须人工送检，不能低温保存必须室温保存。 4.１用于厌氧菌培养的标本（目前尚未开展） 　　 避免标本暴露在空气中，最好用一次性注射器采集，立即接种在厌氧袋或瓶内。 下列情况者应做厌氧菌培养 从未开放的脓肿抽取浓液，特别是伴有恶臭或含有硫磺颗粒时; 通过胸腔穿刺抽出的胸腔穿刺液; 从耻骨联合上方做膀胱穿刺吸出或从肾造管口收集尿液； 从气管切开吸取肺分泌物; 穿刺抽出胸腹积液; 通过腰穿抽出的脑脊液; 插入小导管，用注射器和针头吸出窦道标本。 4.2 痰标本采集 为了减少上呼吸道分泌物的影响，留取标本时，应 先用生理盐水漱口后从深部咳痰，盛于无菌痰杯送检。 4.3 血培养标本 用于血培养的标本采血量要足够，对成人每瓶血 培养应采血10ml不得少于5ml ，婴儿不少于２ml，骨 髓应不少于5ml。绿色双相瓶。 多次培养的血标本应采取双侧双瓶培养，每次采 血应在不同部位的血管穿刺，不能从静脉插管内抽 血，２次分离出同样菌种，是确定病原菌的有力证据。 防止皮肤寄生菌或环境微生物引起的污染是血培 养成败的关键问题，以下三个方面对培养能否成功十 分关键！ 要求： 4.3.1 皮肤消毒3步法： a、75%酒精擦拭静脉穿刺部位50秒以上； b、用2%碘酊（作用30秒）或碘伏棉签（作用60秒）消毒皮肤，从穿刺点向外以2—3cm直径画圈进行消毒。 c、75%酒精脱碘（对碘过敏的患者只能用75%酒精消毒，消毒60秒，待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺）。 4.3.2 培养瓶消毒3步法： a、用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞子； b、75%酒精作用60秒； c、在血液注入血培养瓶之前，用无菌纱布或棉签消除橡皮塞子表面残余的酒精，然后注入血液。 4.3.3 培养瓶接种程序： 抽取血液后，不要换针头，直接注入血培养瓶中，轻轻颠倒混匀，以防止血液凝固。如果同时做需氧和厌氧培养，应同时进行需厌氧培养，先将标本的一半接种到厌氧瓶中，然后再将剩余一半注入需氧瓶中，严格防止将空气注入厌氧瓶中。 研究表明，仅抽血液培养1套（包括需、厌氧两瓶）分离率约80%，采集2套分离率约90%，而培养3套分离率约为99%，因此在确定是感染病人后，初期需在不同部位采集1—3套（2—6瓶）作培养。 为何做厌氧培养？？？ 不仅为做厌氧菌培养，而是一些兼性厌氧菌（如葡萄菌属、肠球菌属）在厌氧环境下生长更好！！ 4.4 血培养标本采集最佳时间 （1）发热（高于38℃）；（2）体温过低（低于36℃） （3）白细胞过多（WBC10000/ul），并伴核左移现象。 （4）中性粒细胞过少，小于1000/ul。 上述4项中有1项或几项同时发生应进行血液培养。对间歇性寒战或发热应在寒战或体温高峰到来之前0.5—1h采集血液，或于寒战或发烧后1h进行，当然，采血培养应该尽量在使用抗感染药物之前进行。 4.４脓性分泌物标本采集 对穿刺液、术后感染分泌物、外伤分泌物等也 一定要采取深部位的分泌物，必要时采取创面和健 康部位过渡节段的少量组织进行培养，这样可以减 少正常菌群的污染。 4.５中段尿标本采集