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发光的大肠杆菌ppt课件
发光的大肠杆菌
朱静宇 张明 石卉
制备感受态细胞
质粒扩增
质粒酶切
目的基因序列扩增
连接
转化
实验方案概述
材料
大肠杆菌
少量PET 28质粒(既为原核质粒又为真核质粒)
显示绿色荧光的PEGFP-N3质粒(为真核质粒)
制备大肠杆菌感受态细胞
挑取E.coil单菌落接种至2mlSOC 培养液,37℃摇床过夜。
挑取0.5—1ml过夜培养的菌液转种到50ml SOB 中,18℃剧烈震荡,直至A600达到0.6,取出水浴10min
4℃ 4000rpm/min 10min.同时冰浴配置TB溶液。
弃上清,倒置离心管于滤纸上
1mlTB溶液打散菌体沉淀,再加入15mlTB 溶液冰浴10-15min。4℃ 4000rpm/min 10min
去上清,沉淀重悬于4mlTB中,冰浴10min
加入280uL DMSO,混合均匀,冰浴10min
分装于EP管中,-80℃或液氮保存
检测感受态细胞的质量(阴性对照)
质粒扩增
pet28的质粒扩增
PEGFP-N3质粒扩增
摇菌
转化
提质粒
转化
取100ul感受态细胞于冰浴上融化
加入1ul pet28质粒和1ul PEGFP-N3质粒,轻轻吹匀,冰浴30min
将菌液放入42°C水浴热激90s,立即放入冰浴中2min
将菌液2000rmp/min离心3min,留200ul上清液将菌体打散,均匀涂布于含卡那抗性的琼脂平板,平板于37°C倒置培养过夜。
同时进行阳性和阴性对照
摇菌+提质粒
将培养过夜的平板取出,用已灭菌的枪尖挑取平板上单个的较大的菌落
将移液枪尖打入5ml培养基内,放入37°C摇床中 rpm/min,摇菌16小时左右
运用Omega等品牌的试剂盒对菌液进行小提
用浓度为1%的胶,120V 20min,用10000的marker做对照验证
测浓度
质粒的酶切
寻找pet28和pegfp-n3的酶切位点
质粒的酶切(两个质粒同时酶切)
确定的酶切位点:EcorR I、Xba I
内切酶:Not I、BamH I内切酶
Buffer:cutsmart
37℃ 温育 4hours
未酶切的质粒作对照,1%琼脂糖凝胶电泳鉴定结果
纯化
01
02
03
04
05
06
设计引物
PEGFP-N3 目的基因扩增
PCR
电泳
胶回收
纯化
测序
PEGFP-N3目的基因EGF的PCR引物
PEGFPN5’ 5TGGGAGGTCTATATAAGCAGAG3
PEGFPN3’ 5’GTCGCCGTCCAGCTCGACCA3’
Primer 2
Tm 68.5 °C
Molecular weight 6863.5 g/mol
Extinction coeficient 181100.0 l/(mol˙cm)
Primer #1
Tm 57.6 °C
Molecular weight 6863.5 g/mol
Extinction coeficient 229700.0 l/(mol˙cm)SXJ
PCR 体系
premix体系
Taka Ra Taq
dNTP mixture
PCR buffer
PEGFP-N3
100ng
Primer 1
0.2-1.0uM
Primer 2
0.2-1.0uM
ddH2O
补足50uL
PCR反应条件
95℃
3min
98℃
10s
60℃
30s
72℃
1min
72℃
5min
4℃
∞
循环35次
02
01
03
加入样品与buffer
混匀,短暂离心
孵育 22℃ 3h
连接
01
02
03
04
05
质粒的转化
感受态细胞冰浴融化
加入质粒,混匀,冰浴
菌液热激90s后冰浴2min
加SOD,37℃摇菌
2000rpm/min 3min 涂布
涂布后,适当培养,挑取单克隆大肠杆菌菌落,进行检验。
挑菌落
镜检
在荧光显微镜下可看见发绿色荧光的大肠杆菌即为实验成功。
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