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张翼鷟
教授 主任医师 ;急性髓系白血病中骨髓微环境介导耐药的探索;相关背景;相关报道;该文首先报道MSC对ALL细胞增殖和凋亡中的影响。(A)与MSC共培养
的ALL细胞系其凋亡率下降。(B)与MSC共培养的ALL原代细胞其凋亡率下降。
;Western blot结果发现与MSC共培养后细胞周期相关蛋白的表达改变。;与MSC共培养后ALL细胞的wnt通路相关基因及蛋白表达改变。;加入wnt抑制剂后,可促进ALL细胞的凋亡;小动物活体成像实验发现加入wnt通路抑制剂及阿糖胞苷后,
小鼠体内瘤体明显缩小,生存期延长。说明wnt通路抑制剂
可拮抗MSC诱导的ALL细胞耐药; 白血病微环境中的多种细胞成分对白血病细胞有保护作用,其中包括基质细胞(间充质干细胞)。为阐明机制,该文作者将急性淋巴细胞白血病细胞与骨髓基质细胞共培养,研究后者对白血病细胞基因和蛋白水平的影响。结果表明Wnt信号参与MSC介导白血病细胞耐药。阻断Wnt通路可增强白血病细胞对化疗的敏感率,改善白血病小鼠模型的存活率。
Yang Yang, Saradhi Mallampati, Baohua Sun,et al. Wnt pathway contributes to the protection by bone marrow stromal cells of acute lymphoblastic leukemia cells and is a potential therapeutic target. Cancer Lett. 2013 June 1; 333(1): . doi:10.1016/j.canlet.2012.11.056.
;2009年Blood一篇文章报道骨髓基质细胞可保护CLL细胞逃避药物诱导的凋亡,
从而导致CLL细胞的耐药;小鼠MSC与CLL细胞共培养后,可降低氟达拉滨诱导的CLL细胞凋亡;同样,人MSC与CLL细胞共培养后,可降低氟达拉滨诱导的CLL细胞凋亡;MSC与CLL细胞共培养后,可降低地塞米松诱导的CLL细胞凋亡;当环磷酰胺与
氟达拉滨联用时
MSC对CLL细胞
的保护作用消失;Western blot结果显示CLL细胞与MSC共培养后,
促细胞凋亡相关蛋白如Mcl-1和PARP的剪切体表达下降;总结;2013年JCI一篇文章报道c-Myc/miR-548m/HDAC6通路
在非霍奇金B细胞淋巴瘤的细胞耐药中起重要作用;将B细胞淋巴瘤细胞系与MSC细胞系HK共培养后,通过基因芯片发现miR-548m, miR-548f和miR-548h的表达下调(A)。Taqman realtime PCR结果发现B细胞淋巴瘤细胞系Jeko-1, HBL-2, SUDHL-4与MSC细胞系HK共培养后,miR-548m的表达下调(B)。Western blot结果同样显示在这三种细胞系与HK共培养后,HDAC6的蛋白表达上调(C)。;套细胞淋巴瘤(MCL),滤泡淋巴瘤(FCL),弥漫大B细胞淋巴瘤(DLBCL)患者的原代
淋巴瘤细胞与MSC细胞系HK共培养后,miR-548m的表达均下降;通过逆转录病毒载体感染Jeko-1使之高表达miR-548m(左上),
通过realtime PCR(左下)和western(右)检测HDAC6的表达,结果发现HDAC6的表达下降。
;荧光素酶报告载体实验证实miR-548m负向调控HDAC6;HBL-2与HK共培养后,生成的集落数明显多于单独培养组。;在单独培养组与共培养组加入
环孢素A和/或米托蒽醌,检测
淋巴瘤细胞的凋亡率。;体内成瘤实验结果显示,
将HK和HBL-2共同皮下注射组的
瘤体明显大于单独注射HBL-2组;HBL-2细胞高表达miR-548m后,瘤体较对照缩小。与HK共同
注射后,miR-548m+组的瘤体也小于miR-548m-组;miR-548m的表达与c-Myc呈负相关;上调miR-548m表达后,c-Myc的表达下降;总结;我们的工作;与MSC共培养后,KG1a,U937 (A)及
AML原代细胞(B)中c-Myc的表达升高。;10058F4是c-Myc的特异性抑制剂,在AML细胞培养中加入10058F4,
AML细胞c-Myc的表达明显下降(B),AML细胞的凋亡率明显升高(A)。;与MSC共培养体系中加入10058-F4,AML细胞的凋亡率高于未加10058F4组。;通过siRNA干扰使AML细胞系U937中c-Myc的表达下调(A)。
干扰后,AML细胞的凋亡增加,加入米托蒽醌后,干扰组的凋亡率高于未干??组(B)。;通过transwell实验证实,MSC对AML细胞起作用需要两者间紧密接触。如图A所示,
AML细胞与MSC共培养后其凋亡率显著下降,而transwe
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