卷心菜中过氧物酶热稳定性的初步研究.docVIP

实验一 卷心菜中过氧化物酶热稳定性的初步研究 实验原理 果蔬中的过氧化物酶（peroxidase）往往具有较高的热稳定性，对果蔬进行热烫处理时，常以过氧化物酶是否失活作为热烫是否充分的标准。许多研究表明果蔬中的过氧化物酶有热稳定和热不稳定两部分。这两部分的比例取决于果蔬的品种和热烫处理的温度。 过氧化物酶催化的典型反应为：H2O2＋AH2→A＋2H2O。 AH2是无色的还原性化合物，如果它经过氧化转变成有色的A，那么反应体系在特定波长下的吸光值就会随反应进行而增加。因此，可以用分光光度法测定过氧化物酶的活力。 试剂和仪器 试剂：0.05mol/L磷酸盐缓冲液pH7.0，含1.0mol/L NaCl(缓冲液Ⅰ)、0.1mol/L磷酸盐缓冲液pH7.0(缓冲液Ⅱ)、1%邻苯二胺-乙醇溶液、0.3%过氧化氢溶液 仪器：组织捣碎机、抽滤装置、水浴锅、721分光光度计（含比色皿）、秒表、常规玻璃仪器 实验步骤 从卷心菜中提取过氧化物酶 125g卷心菜＋125mL缓冲液Ⅰ ↓ 均质（20000rpm，2min） 匀浆 ↓ 抽滤 液体 ↓ 离心（8000rpm，15min，4℃） ↓ˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉˉ↓ 残渣 滤过液（粗酶液） 过氧化物酶热处理 将从卷心菜中萃取得到的过氧化物酶粗酶液置于试管中。 取适量酶液稀释5倍左右，过滤后测定酶活。 另取适量酶液分别置于已编号的试管中，将试管在60℃水浴中保温1 min，然后移至85℃水浴锅中，分别处理0.5min、1min、1.5 min、2 min、3 min、5 min、7 min和10 min，然后立即将试管转移至冰浴中，快速冷却至0℃。 再取适量酶液分别置于已编号的试管中，并将试管在60℃水浴中保温1 min，然后在100℃下分别处理15s、30 s、45 s、1 min、1.5 min、2 min和3 min，然后在冰浴中快速冷却，测定残余过氧化物酶活力。 过氧化物酶活力测定 如果热处理后酶液中产生混浊，应在比色前过滤去除沉淀。 向比色皿中加入2.6mL缓冲液Ⅱ，0.1mL邻苯二胺-乙醇溶液，0.2mL过氧化氢溶液，然后加入0.1mL酶液，并立即搅匀计时，在430 nm下测定反应混合物的吸光值随时间的变化。空白以缓冲液代替酶液。根据吸光值变化情况调节加酶量，保持酶液和缓冲液体积之和恒定。 数据记录与处理 粗酶液活力测定数据 时间/S 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 110 120 吸光度 0.105 0.187 0.262 0.342 0.427 0.508 0.594 0.682 0.773 0.867 0.966 1.062 用Excel处理数据，得到下图，加酶量0.1mL，稀释倍数为5（1mL原酶液+4mL蒸馏水）。 由图可知：直线的斜率为0.5198，也就是说每分钟吸光度值上升0.5198。由于稀释倍数为5倍，加酶量为0.1mL，因此计算得出酶活力为0.5198×50=25.99U/mL。 2、85℃热处理后残余酶活测定数据 热处理时间不同的几组样品在不同稀释倍数及加酶量条件下分别测定了消光值，如下表： 热处理 消光值 时间/s 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 110 120 85℃ 0.5min 0.045 0.088 0.138 0.188 0.240 0.293 0.348 0.405 0.464 0.523 0.585 0.649 85℃1.0min 0.047 0.091 0.136 0.181 0.229 0.278 0.327 0.379 0.432 0.486 0.541 0.599 85℃ 1.5min 0.015 0.032 0.054 0.075 0.097 0.119 0.141 0.165 0.188 0.211 0.234 0.259 85℃ 2.0min 0.042 0.078 0.117 0.155 0.193 0.234 0.275 0.317 0.361 0.406 0.452 0.499 85℃ 3.0min 0.006 0.012 0.018 0.025 0.031 0.038 0.044 0.052 0.059 0.066 0.074 0.082 85℃5.0min 0.004 0.004 0.005 0.006 0.008 0.009 0.011