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* Genistein后处理介导大鼠海马CA1区 eNOS/Nrf2/HO-1信号通路及其神经保护作用 来源：赛恩斯http：// 一、研究的背景及意义 1.对缺血性脑中风发病机制及防治的研究已成为医学界关注的重点。 2.缺血大脑迅速获得血液供应是阻止缺血性神经元损伤的首要措施，然而，大量的血液迅速再灌注又进一步加重缺血组织的损伤--即缺血再灌注损伤。 3. 氧化应激和炎症是缺血再灌注损伤病理生理机制的重要组成部分。脑缺血再灌注早期即有大量活性氧产生，并迅速启动损伤级联，加剧了初始损害最终导致神经元不可逆的损伤。因此，再灌注早期阻断氧化应激损伤是有效降低迟发性神经元死亡的关键。 4.Genistein具有酪氨酸激酶抑制剂活性和抗氧化作用。 5、Genistein作为酪氨酸激酶抑制剂可有效减弱短暂全脑缺血造成的神经元的延迟性死亡；一个单纯的氧诱导的脑缺血小鼠模型显示Genistein具有抗氧化活性。 6.eNOS活性的升高对脑中风具有有益作用。另研究发现，Genistein能够诱导eNOS活性并激活核因子NF-E2相关因子(Nrf2)，进而诱导抗氧化酶表达、减少心血管疾病的发生。 那么，Genistein postconditioning(GPC，即缺血后给予Genistein)是否能通过eNOS/Nrf2/ARE信号通路降低氧化应激，从而发挥抗缺血性神经元损伤的作用？目前尚未见报道。 本研究采用四动脉结扎(4-VO)全脑缺血模型，观察GPC对缺血性神经元的保护作用，并探讨其可能的分子机制，为临床防治缺血性脑中风提供理论依据。 二、材料与方法 1.主要实验仪器和试剂 大鼠脑立体定位仪 大鼠脑微量注射泵 冰冻切片机 激光扫描共聚焦显微镜 酶标仪 电泳设备 摇床 Morris水迷宫 超低温冰箱等 组织裂解液 BCA蛋白浓度测定试剂盒 eNOS、p-eNOS、 Nrf2、HO-1一抗及其相应的二抗 NBT/BCIP显色液 NeuN、4-HNE、8-OHdG一抗及对应的荧光二抗 TUNEL试剂盒 2.实验分组 SPF级成年雄性SD大鼠 随机分组及4-VO模型 Sham I/R Veh1(IR+DMSO) GPC Veh2(GPC+NaCl) L-NAME 30m 24h I10m I10m I10m I10m I10m 30m 6h 1d 5d 椎动脉电凝并分离颈总动脉 缺血 尾静脉注射Genistein 1mg/kg 侧脑室注射L-NAME 1mg/5μl 0.9%NaCl 0.1%DMSO 3d 7d 9d 3.技术路线图 再灌注5d检测 海马CA1区神经元 的凋亡及存活 实验方法及检测指标 再灌注30min, 6h,1d,3d 观察 p-eNOS, Nrf2, HO-1蛋白表达 免疫荧光 染色法 蛋白免疫 印迹技术 TUNEL染色 及NeuN染色 再灌注3d观察 海马CA1区神 经元8-OHdG, 4-HNE, Nrf2, HO-1蛋白的 表达及定位 Morris水迷宫 再灌注7-9d， 检测大鼠的空间 学习和记忆能力 4.统计学分析 数据整理后，应用SigmaStat3.5统计软件进行统计学分析。所有计量资料数值以均数±标准差表示，采用单因素方差分析(ANOVA)，多个实验组与一个对照组比较用最小显著差法(LSD)，各实验组之间比较采用q检验(Newman-keuls test)，P 0.05为差异有统计学意义。 三、实验结果与讨论 Genistein后处理是否具有神经保护作用呢？ 图1 NeuN及TUNEL免疫荧光染色观察再灌注5d大鼠海马CA1区神经元的存活及凋亡 图A：NeuN (红色) 染色 ：生存的神经元；TUNEL (绿色)染色：凋亡样神经元；图B：海马CA1区1mm 长度内NeuN 阳性神经元数量统计图；图C：海马CA1区1mm长度内 TUNEL阳性神经元数量统计图; *P0.05 vs. I/R 组， #P0.05 vs. GPC 组，n=5; 40×, bar = 50μm A B C 小结 1 Genistein后处理对缺血性神经元损伤具有保护作用，eNOS激酶抑制剂L-NAME减弱了该作用，说明eNOS可能参与了此保护作用。 Genistein后处理是否诱导eNOS激活（磷酸化）? 图2 GPC对大鼠海马CA1区神经元eNOS、p-eNOS 蛋白表达的影响 图A：再灌注不同时间点p-eNOS、eNOS蛋白的表达；Sh：Sham组；R：再灌注；－： I/R组；＋： GPC组；GPC: Genistein后处理；图B： p-eNOS蛋白表达统计图： n=4； *p0.05 vs. I/R组 A B 图3 L-NAME对再灌注3d