小鼠尾静脉注射.ppt

实验药理学基础肝功能对药物代谢的影响实验 基础药理学 本次课安排 实验动物基本操作 实验动物基本操作 实验动物基本操作 实验动物基本操作 实验动物基本操作 实验动物基本操作 实验动物给药方法 实验动物给药方法 实验动物给药量的计算 4、实验动物给药量的计算 4、实验动物给药量的计算 Drug distribution Drug distribution Drug biotransformation Drug biotransformation 高亲脂性。 血浆蛋白的结合率为96%-98%。 代谢迅速，主要在肝脏进行。 异丙酚(propofol) 小鼠肝损伤模型 Carbon tetrachloride(CCl4) 小鼠肝损模型制备方法 实验前24h用10%四氯化碳0.2ml/10g体重皮下注射。 实验步骤 建立肝脏损伤模型（已制备）； 小鼠称重、做标记； 腹腔注射1%propofol溶液，注射体积0.1ml/10g体重。 1.独立完成实验，不串岗，认真如实记录数据； 2.遵守实验室规制制度，离开实验室须经教师许可； 3. 数据资料用邮件发回，请不要使用移动存储器； 4.器具须用水擦洗、擦干，按原样整齐放置； 5.实验台须用湿的干净抹布擦拭干净。用品摆放整齐、关机； 6.每次实验后安排2个小组值日：督查各组善后工作；扫地、拖地，凳子放整齐；清洁洗涤台、将动物尸体送动物中心； 7.动物尸体和一般实验垃圾必须严格分开放置； 8.实验报告在1周内提交。 注意事项 实验课注意事项 注意事项 药理学与药物研发 内 容 1 实验1：介绍实验药理学，常用动物试验方法，肝功能对药物代谢的影响实验。 2 实验2: 肾上腺素受体、M受体激动剂和拮抗剂对家兔血压的影响。 一、动物实验的基本技能和实验技术基础? 1.?实验动物的标记,捉持,给药方法（大、小鼠）和处死 2.示教 ? 二、肝功能对药物代谢的影响实验 1.讲解和讨论 2.自主实验 3.讨论：实验设计, 原理, 结果及其意义 1、 实验动物的标记 大、小鼠和白色家兔的标记常用3～5％黄色苦味酸溶液涂于皮毛上标号。 小鼠性别鉴别 性 别 外生殖器与肛门之间 雄 性 距离长 ，有毛生长，无纵行沟 雌 性 距离短，无毛生长，能见到一条纵行沟 实验动物随机分组 No. 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 Random number 04 37 60 88 02 03 24 17 97 81 56 51 92 34 86 60 82 55 51 33 Group a b a a a b a b b b a b a a a a a b b b 用Excel产生随机数字 将20只小鼠分为A,B二组 动物实验每组所需的样本数 动物 计量资料 小(小鼠、大鼠、蛙) ≥10 中(兔、豚鼠) ≥6 大(犬、猫) ≥5 计数资料 ≥30 ≥20 ≥10 2、实验动物的捉持（大、小鼠）? 小鼠的捉持: 右手抓鼠尾→ 鼠尾略向后拉→左手的拇指和食指抓住小鼠两耳后项背部皮毛→ 以无名指及小指夹住鼠尾→ 左手翻转使鼠腹部朝上,头略朝下。 大鼠的捉持: 捉持和固定方法基本同小鼠，无经验者可戴上防护手套，并应动作轻柔。 用右手捉住鼠尾，放在鼠笼盖上，向后轻拉鼠尾； 左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。 3、实验动物的给药方法（大、小鼠）? （1）小鼠灌胃（i.g.） 将小鼠固定后，使颈部拉直，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，压其头部，使口腔与食道成一直线，沿上腭壁向鼠口腔的后下方轻轻插入食道。如遇阻力，可将针头抽出再插，以免刺破食管或误入气管。一般给药量为0.1～0.3ml/10g（体重）。? 大鼠灌胃 （2）小鼠腹腔注射(i.p.) 右手持注射器，45度角刺入腹白线偏左的下腹部，进针3mm左右有落空感时表示已进入腹腔，回抽无肠液、尿液（有空气）即可注射。给药容积一般为5～10ml/kg。 注意：切误使针头向上注射，以防针头刺伤内脏；取药时略多，针头向上赶去气泡后多余药品放回原瓶。 大鼠腹腔注射 (0.1 - 0.2 ml/100 g) 实验动物基本操作 实验方法 （3）小鼠尾静脉注射(i.v.) 小鼠置于套桶，用左手抓住小鼠尾巴中部。拔去沿尾部静脉走向的毛，置尾巴于45～50℃温水中浸泡几分钟或用75%酒精棉球反复擦拭尾部，以达到消毒和使尾部血管扩张及软化表皮角质的目的。 持4号针头注射器，使针头与静脉平行(小于30°角)，从尾巴的下1/4处进针注射量为0.05～0.1ml/10g体重。拔出针头后，用拇