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共聚焦(无图).ppt

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共聚焦(无图)

潘伯群 -1- 书面实验报告: 1 如何判断共聚焦图片的荧光质量? 2 影响共聚焦图像质量的硬件因素有哪些? 请同学们撰写好实验报告后,下次实习前由各班班长收齐并交给中心负责教学的王老师处! 评判荧光样品制备是否有成功,可从以下几个方面考量: 1.荧光标记反应的特异性和荧光信号定位准确性 2.保持样品的结构形态的完整性和免疫活性 3.荧光信号的响应准确、灵敏、具有可重复性 4.荧光强度 5.荧光稳定性 6.荧光信号的分布的一致性 7.两种及两种以上荧光信号之间荧光光谱交叉,即串色性 8.背景噪声干扰性 影响获取图像质量主要的共聚焦参数: (1)检测针孔(Detector Pinhole ) (2)激光功率(Power) (3)声光控制器( AOTF--Acousto Optic Tunable Filter) (4)光电倍增管增益及静噪控制(PMT Gain PMT Offset) (5)重复扫描-数字减噪(Li.A.、Aver.) (6)扫描图分辨率(Format): 除此以外 物镜(Objective)、 扫描速度(Scan Speed) 扫描方向(Unidirectional Scan / Bidirectional Scan) (X-Direction) 数码放大(Zoom In) …………… Speed Zoom (二) 固定组织时应注意 : ①应力求保持组织新鲜,勿使其干燥,尽快固定处理; ②组织块不宜过大过厚,必须小于2cmXl.5cmx0.3cm,尤其是组织块厚度必须控制在0.3cm以内; ③固定液必须有足够的量,在体积上一般大于组织20倍以上,否则组织中心固定不良影响效果; ④组织固定后应充分水洗。 (三)薄片样本(Thin Samples) 对于单层培养的细胞,组织切片等较薄的样品,主要是获取高分辨率的图像,由于介质薄,因而折射系数的匹配问题不像厚样品那么重要,故此可以用甘油作为介质的物镜(63XGlyc、100XOil)。 (四)厚片样本(Thick Samples) 对于厚样本(20-2mm)在使用中应注意: 盖玻片要贴紧样本,不要留有空隙,以免工作距离不够产生象差; 采用工作距离足够长的物镜(10X、20X或40X),不可以用油镜,油镜的工作距离短,会顶破盖玻片,损坏样本,甚至物镜,且成像也不清晰; 进行断层成像会有荧光损失,从而影响图像的质量,采取提高检测针孔[Pinhole≥1(AU)],增加激光穿透性; 在进行“Continuous”扫描时,找到最亮的层面进行调焦调整相应参数。 (五)玻片处理和涂胶 对易造成细胞、组织脱片的问题采取以下两措施,可防止脱片现象出现。 1.载玻片和盖玻片处理新载玻片上有油污,必须经过清洁液浸泡12~24h,流水充分漂洗后用蒸馏水清洗5遍以上,浸泡在95%酒精内2h,用绸布擦干或用红外线烤箱烤干均可,贮放于玻片盒内备用。盖玻片很薄,以上处理程序必须缩短,清洁液浸泡只需2h,流水冲洗注意勿损伤玻片等。不主张用烘烤箱干燥。 2.载玻片上涂多聚赖氨酸液粘附剂; (六)自发荧光(Autofluorescence) 首先看它时什么颜色?在何部位,与靶区有何关联?是否是杂质?所选择的荧光染料与之必须不同; 亮度如何?如果太亮需要避开、减弱; 是否需要它?通常情况下,有助于确定染色区的定位; 来源何处?叶绿体、卵黄、胶原蛋白、还是其他的来源? 淬灭、漂白; 苏丹黑可以淬灭脂质的自发荧光; 组织内的自发荧光可以被硼氢化钠淬灭。 组织自发荧光淬灭剂 AutoFluo Quencher * 一.概述 二.影响共聚焦检测质量的主要设备参数 三.因样本的处理不当影响共聚焦检测质量的 因素 四.样本制作过程需要注意的问题 光电倍增管 检测针孔 光源针孔 光源 分色镜 物镜 样本 聚集平面 一.概述 二.影响共聚焦检测质量的主要设备参数 三.样本的处理及影响共聚焦检测质量的因素 四.样本制作过程需要注意的问题 Pinhole 检测针孔:默认值=1,数值1解像度较好, 数值1讯燥比较好 Pin=0.2 Pin=1 Pin=2 光电倍增管 PMT PMT gain /PMT ffset 体会值: 480 ~ 500 Gain 680 ~760 - 8 ~ - 0 Offest + 0 ~ + 2 0 255 0 255 0 255 用线平均法进行线扫描 用线平均法进行线扫描 Line Aversge的作用是使用平均法线扫描的图像,即对每条线进行重复多次的扫描,并求每个采样点的算术平均值。 体会值:常用2、4,ACCU扫描模式选4、8。 Aversge的功能

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