- 1、本文档共70页,可阅读全部内容。
- 2、有哪些信誉好的足球投注网站(book118)网站文档一经付费(服务费),不意味着购买了该文档的版权,仅供个人/单位学习、研究之用,不得用于商业用途,未经授权,严禁复制、发行、汇编、翻译或者网络传播等,侵权必究。
- 3、本站所有内容均由合作方或网友上传,本站不对文档的完整性、权威性及其观点立场正确性做任何保证或承诺!文档内容仅供研究参考,付费前请自行鉴别。如您付费,意味着您自己接受本站规则且自行承担风险,本站不退款、不进行额外附加服务;查看《如何避免下载的几个坑》。如果您已付费下载过本站文档,您可以点击 这里二次下载。
- 4、如文档侵犯商业秘密、侵犯著作权、侵犯人身权等,请点击“版权申诉”(推荐),也可以打举报电话:400-050-0827(电话支持时间:9:00-18:30)。
查看更多
JASTATNFκB通路介导高糖引起的人脐静脉内皮细胞的损伤与炎症反应
硕士学位论文
JAK.STAT/NF.rd3通路介导高糖引起的人脐 静脉内皮细胞的损伤与炎症反应 硕士研究生:廖静秋
指导老师:吴文教授 IIIIIIIII rll M Illll IIIII rll II IIJ
Y3 1 1 691 7
摘要
研究背景
糖尿病(Diabetes mellitus,DM)是一组以高血糖为特征的代谢性疾病。近 年来,随着社会发展,经济条件改善,人民生活水平提高,糖尿病患病率逐年 上升。糖尿病血管病变(Diabetic angiopathy,DA)是糖尿病患者最常见的慢性 并发症,也是糖尿病患者失明、截肢以及死亡的主要原因之一,严重影响患者 预后和生活质量。
高血糖通过直接或间接的影响引起血管内皮功能异常,启动或加重糖尿病 血管病变。过去关于高血糖损伤血管内皮细胞的机制主要集中于糖基化终末产 物、多元醇通路、蛋白激酶C等,近年来,新的研究目光己逐渐转向内皮细胞 损伤过程中的各种细胞信号转导通路。Janus激酶/信号转导子与转录激活子 (Janus kinase signal transducer and activator of transcription,JAK/STAT)通路是 细胞信号转导的重要通路之一。新近研究发现,JAK/STAT通路参与了糖尿病并 发症的发生发展。Marrero MR等人发现,高糖在。肾小球滤过膜细胞通过激活 JAK/STAT通路导致肾小球滤过膜细胞的增殖,从而引起糖尿病肾病。此外,有 研究通过建立糖尿病大鼠模型,发现JAK/STAT信号转导通路的激活可能参与了 糖尿病心肌病心肌纤维化的发生发展。而对于JAK/STAT通路是否参与高糖诱导 血管内皮细胞的多种损伤,目前鲜有报道。
万方数据
摘 要
核因子.rd3(nuclear factor-KB,NF.r,B)信号通路对炎症反应、免疫反应等 具有重要调节作用。相关研究显示高糖可通过激活NF.1cB通路促使内皮细胞炎 症及免疫反应相关因子生成增多进而推进血管炎症的发生发展,而血管炎症正 是糖尿病血管病变发生发展过程中一个重要的阶段。已有多项证据表明 JAK/STAT信号通路与NF.r,B信号通路之间存在交互作用。Digicaylioglu M等发 现红细胞生成素(EPO)可通过NF.v,B信号通路介导神经保护作用,而这一过 程可被JAK/STAT通路调节。那么,在血管内皮细???中, JAK/STAT信号通路 可否调节NF.rd3信号通路介导高糖诱导的血管内皮细胞炎症反应还有待进一步 研究探讨。
为此,本文旨在探讨JAK/STAT通路在高糖诱导人脐静脉内皮细胞 (HUVECs)损伤过程中的作用以及在这一过程中JAK/STAT通路可否调节 NF.r,B信号通路介导高糖诱导的血管内皮细胞炎症反应,为深入阐明高糖损伤 血管内皮细胞的作用机制提供新颖的实验依据。
研究方法 1人脐静脉内皮细胞的体外培养
细胞培养在含10%FBS的低糖DMEM培养基中,加入100 U青霉素、100 mg 链霉素,置于37℃、含5%C02的培养箱中培养。待细胞融合达80%后,使用 0.25%胰蛋白酶.EDTA进行消化,适度消化后加入完全培养基终止胰蛋白酶的消 化作用。将细胞吹落以形成细胞悬液。1200 r/min离心5 min,弃上清,按1:3传 代。
2实验分组
实验分为6组:(1)t常对照(contr01)组;(2)高糖(high glucose,HG) 损伤组;(3)AG490(JAK/STAT通路抑制剂)预处理+高糖损伤组;(4)AG490 组;(5)PDTC(NF.r,B通路抑制剂)预处理+高糖损伤组;(6)PDTC组。
3 CCK.8实验测定细胞存活率 将HUVECs接种在96孔培养板中,当细胞在培养孔内生长至大约80%时,
II
万方数据
硕士学位论文
根据实验要求给予不同处理,于每孔加入10 txL CCK.8溶液,37℃孵育2 h,
用酶标仪检测各孔吸光值,波长设定为450 nm,并根据公式:细胞存活率(%)
=处理组OD值/对照组OD值×100%,求得细胞存活率。
4 Western blot法检测JAK2、STAT3、caspase.9、eNOS和NF.r,B p65的表达 将HUVECs接种于60 mm培养皿中,细胞贴壁生长至80%时给予不同处理
因素,弃培养液,用预冷的PBS冲洗2次,各皿加入80¨l裂解液后置于4℃ 裂解30 min,12000 r/min离心15 min,取上清液,蛋白浓度采用BCA法进行测 定。总蛋白经SDS.PAGE分离后,转移到PVDF膜上。使用5%脱脂奶粉封闭 90 min后,弃封闭液,分别加入p-JAK2和JAK2(1:2000),p-STAT3、STAT3 和ca
您可能关注的文档
- IL33在痛风中的作及其机制.docx
- IL35基因转染小鼠骨髓间充质干细对小鼠免疫功能的研究.docx
- IL4和IL12在宫颈癌及癌病变中的表达及对紫杉醇过敏的影响.docx
- IL33通过ST2RK12MSK1信号通路促进哮喘气道重塑机制的研究.docx
- IL34调控FLS在RA发病制中的作用研究.docx
- iLBC语算法研究及DSP实现-通信与信息系统专业毕业论文.docx
- IL8基因真核表达载体的构建及其对OVCAR3细胞生学机制的分析.docx
- il[涵洞、渡槽、倒虹吸管模板及支(拱)架工程检验批质量验收记录表.doc
- IL8介导血平滑肌细胞迁移机制及G31P的作用初探.docx
- IL9在小鼠银屑病皮损的表达及其抗体对IL17 CCR的影响研究.docx
文档评论(0)