药理学实验基本知识学习.ppt

选择一根最为充盈的血管，右手持4号针头使其与尾部呈30度角刺入静脉，针头在静脉内平行推进少许，左手三指连针头和鼠尾一起捏住固定，以防动物活动时针头脱出。回抽见血，且推动药液无阻力、并可见沿静脉血管出现一条白线说明针头在血管内，可注药 。如遇到阻力较大，局部发白变硬时，说明针头不在静脉内，需拔出针头重新穿刺。注射完毕后拔出针头，轻按注射部止血。一般选择尾两侧静脉，针刺宜从尾尖端开始，渐向尾根部移动，以备反复应用。 一般一次注射量为0.05～0.2ml/10g体重。 大鼠亦可舌下静脉注射或待其麻醉后，切开其大腿内侧皮肤进行股静脉注射，也可颈外静脉注射。 豚鼠：可选用前肢皮下头静脉、耳壳静脉、外颈静脉、或脚背中足静脉等多部位进行注射。偶还可心内注射。 家兔：家兔静脉注射一般采用耳缘静脉。 注射前先剪除其表面皮肤上的毛并用水湿润局部，血管即显现出来。可先轻弹或用酒精棉球揉擦耳尖部并用左手食指和中指轻压耳根部，拇指小指夹住耳边缘部分，以左手无名指放在其下作垫，待静脉显著充盈后，右手持带有6~8号针头的注射器刺入静脉（第一次进针点要尽可能靠远心端，以备反复应用），顺着血管平行方向深入1厘米后，放松对耳根处血管的压迫，左手拇指和食指移至针头刺入部位，将针头与兔耳固定 针头刺入血管后再稍向前推进，轻轻推动针栓，若无阻力和局部皮肤发白、隆起现象，即可进行药物注射， 实验动物的麻醉 1.局部麻醉 浸润麻醉、阻滞麻醉、和椎管麻醉常用0.5～1％普鲁卡因，表面麻醉宜选用2%丁卡因溶液。 2.全身麻醉 （1）吸入麻醉 小鼠、大鼠和兔常用乙醚吸入麻醉。将浸过乙醚的脱脂棉花铺在麻醉用的玻璃容器底部，实验动物置于容器内，容器加盖。乙醚具挥发性，经呼吸道进入肺泡后对动物进行麻醉，吸入后约15～20分钟开始发挥作用，适用于时间短的手术过程或实验。内放置乙醚棉球可追加麻醉时间。但在麻醉初期，动物常出现强烈兴奋的现象，因其对呼吸道有较强的刺激作用，可使粘液分泌增多以致堵塞呼吸道。另外，乙醚易燃、易爆，故需要专人管理。使用时应避火、通风、注意安全。 （2）注射麻醉 适用于多种动物，注射方法不一。不同动物对注射麻醉药的反应不尽相同，故需根据实验的目的针对不同的实验动物选用合适的麻醉药种类和剂量。 表3-6-1 注射麻醉药的剂量与给药途径 药 物 （常用浓度）动 物给药法剂 量（mg/kg）维持时间（小时）备 注戊巴比妥钠（1～5％）犬猫兔豚鼠大鼠小鼠I.V.I.P.I.H.I.P.I.P.I.P.3030504545451～21～21～21～21～21～2硫喷妥钠（5％）犬、猫兔、大鼠I.V. I.P.I.V. I.P.20～3030～500.25～0.50.25～0.5抑制呼吸，I.V.宜慢，应临用时配乌拉坦 （20％）猫、兔大鼠、小鼠蛙I.V. I.P.I.M.淋巴囊90～1000130020002～42～42～4毒性小，较安全氯醛糖（2％）猫、兔大鼠I.V. I.P.I.V. I.P.80805～65～6安全，肌松不全氯乌合剂猫兔I.V. I.P.氯75乌7505～6I.V.静脉注射 I.P.腹腔注射 I.M.肌肉注射 I.H.皮下注射 *氯:氯醛糖 乌：乌拉坦 在麻醉过程中，除参照上述一般药物用量标准外，还必须密切注意动物的状态，以决定麻醉药的用量。麻醉的深浅，可根据呼吸的深度和快慢、角膜反射的灵敏度、四肢及腹壁肌肉的紧张性以及皮肤夹捏反应等进行判断。当呼吸突然变深变慢、角膜反射的灵敏度明显下降或消失，四肢和腹壁肌肉松弛，皮肤夹捏无明显疼痛反应时，应立即停止给药。静脉注药时应坚持先快后慢的原则，避免动物因麻醉过深而死亡。 实验动物的处死方法 1.颈椎脱臼法： 本法最常用于小鼠。用拇指和食指压住小鼠头的后部，另一手捏住小鼠尾巴，用力向后上方牵拉，使之颈椎脱臼，延脑与脊髓离断而死亡。处死大鼠也可用此法，但需较大力气。 2.空气栓塞法： 主要用于大动物的处死。用注射器将空气快速注入静脉或心脏，使动物发生静脉空气栓塞，特别是肺动脉栓塞而致死。 兔一般选用耳缘静脉，狗由前肢或后肢皮下静脉注射。 一般兔与猫可注入空气10～20ml；狗需注入70～150ml空气。 3.心脏取血法： 用粗针头一次针刺心脏大量抽取血液，可致动物死亡。此法常用于豚鼠、猴等 4.大量放血法： 大鼠可采取摘除眼球，由眼眶动脉放血致死。断头、切开股动脉亦可使其大量失血而死。家兔可在麻醉情况下，由颈动脉放血，并轻轻挤压胸部，尽可能使之大量放血致死。 此法对内脏器官无损伤，是采集病理切片标本和血液样本的一种较好办法。 注射或吸入麻醉剂法等。 蛙或蟾蜍类可断头，也可用探针经枕骨大孔破坏脑和脊髓处死。 药理学实验概述 一、药