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留取中段尿 简单易行,又无感染的危险。通常取晨起第一次尿送检。尿液在膀胱内停留6-8h以上(给细菌足够的繁殖时间) 尿标本必须用无菌带螺帽的容器采集,否则为拒收标本。 痰培养容器?NO。。。 脑脊液培养 采集的临床指征 在生理情况下,血液和脑脊液之间有血脑屏障,阻碍各种微生物通过血液进入中枢神经系统。因此正常人的脑脊液是绝对无菌的。 当怀疑结核性、化脓性、流行性、霉菌性脑膜炎时进行脑脊液培养。 严格无菌操作 标本采集 以 70%酒精或 2%碘酊消毒背部下方,并麻醉之,然后以一特制通管针,轻轻的由第三与第四腰椎间的中线部位穿刺入脊髓蛛网膜,采集约 3-5ml 脑脊液于 3 支无菌试管中,每支试管至少 1-2ml,然后马上将第 2 根(或第 1 根)送至实验室。做脑脊液培养时,建议同时做血培养。腰穿时必须作彻底消毒和无菌操作。 脑脊液标本的运送 采集后应正确盖好,防止泄漏或容器外部留有残留物。常温立即送检,实验室收到标本后应立即接种。脑脊液标本送检的理想时间为 15 分钟内,半小时送检是可接受的,如果送检时间超过 1 小时,则会影响结果。 注:某些细菌具有自溶酶,放置时间过长易自溶死亡,因此,标本应立即送检,并且保温(禁止放冰箱,因脑膜炎双球菌遇冷死亡) 穿刺液培养 穿刺液主要包括: 胆汁 胸水 腹水 心包液 关节液 脑脊液 在正常人体中,上述体液均是无菌的。有感染的情况下检出的细菌,在排除污染后应视为病原菌,及时给予正确的治疗。 采集的临床指征 临床上出现胸腔积液(胸水)、腹腔积液(腹水)、关节液、心包腔积液、鞘膜腔积液等情况时,多因浆膜腔发生循环障碍、炎症、癌浸润等病变,腔内液体渗漏增加所致。 标本采集 一般由临床医师在无菌操作下穿刺抽取或外科手术采集标本。取5~10ml于无菌肝素抗凝管中(0.5mg肝素可抗凝5ml标本),充分混匀后立即送检,不能有凝块。 大便培养 采集指征 腹泻病人应尽量在急性期(3天内)、在用抗生素前留取标本以提高病原菌的检出率,陈旧标本影响检出阳性率。 连续出现脓血、黏液、糊状、米泔样等形状异常的粪便。 疑似细菌性食物中毒患者,大便培养可作为一个辅助检查手段。 怀疑感染伤寒沙门菌、细菌性痢疾的患者。 胃肠道感染怀疑霍乱等弧菌感染者。 标本采集 无需特别准备,但最好不要住院超过3d,在使用抗生素前采集最佳。 自然排便后,可挑取新鲜粪便中有脓血、黏液部分的粪便约2~3g,液体粪便取絮状物2~3ml,糊状、米泔样等性状异常的粪便盛于无菌的容器中或置于保存液中送检。 临床微生物标本采集、转运与处理 微生物标本规范化采集的重要性 正确采集、处理与运送细菌培养的标本直接关系到致病菌培养的正确性与阳性率的高低,是临床细菌检验成功的关键。 标本质量的好坏直接影响诊断结果的正误,不当的标本可导致假阴性、假阳性结果的出现,因此标本采集与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重要的临床感染信息的基础。 好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患照顾质量,降低医疗成本。 临床标本的分类 带菌体液 无菌体液 痰液 血液 咽拭子 脑脊液 尿液 关节腔积液 粪便 胸腹水、胆汁 其他类别 其他类别 发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查,二、三级医院微生物标本送 检率不应低于70%。 尽量在抗菌药物使用前采集标本。 标本采集时应严格执行无菌操作,减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。 标本采集后应立即送至实验室。床边接种可提高病原菌检出率。 以棉拭子采集的标本如咽拭、肛拭或伤口拭子,宜采用插入运送培养基送检。 混有正常菌群的标本如咳痰、尿液、伤口拭子,不可置肉汤培养基内送检。 盛标本容器须经灭菌处理,但不得使用消毒剂。 送检标本应注明来源和检验目的,使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境。 血培养 采集的临床指征一般患者出现以下一种体征时可作为采血的重要指征: 发热(≥38℃)或(低温≤36℃) 寒战 白细胞增多(特别有“核左移”未成熟的或杆状核白细胞) 皮肤黏膜出血、昏迷、多器官衰竭、血压降低、CRP升高及呼吸快 特殊患者(如血液病)出现粒细胞减少(成熟的多形核白细胞<1000×109/L)、血小板减少等,或同时具备上述几种体征的临床可疑菌血症应采集血培养 新生儿菌血症,进行血培养同时应增加尿液和脑脊液培养 对入院危重感染患者在未进行系统性抗菌药物治疗之前,应及时采集血培养 采血量: 血液中细菌和真菌的检出率依赖于足够的血量,但并非越多越好,超过一定数量的采血量会稀释培养基内的肉汤,使肉汤无法有效中和血中的抑制物质(补体、抗体、抗生素)。血量
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