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* * * * 为什么这些临床表现各异的综合征有共同的缺失或重复区域? 产生这一现象的遗传学机制? 22q11的基因组结构? * Part 3 LCR22与染色体重排 * LCR简介 低拷贝重复序列(low copy repeats,LCR)分散地位于染色体内,其序列总长占人类基因组的近5% 单个LCR的 大小介于10-240kb之间 不同位点的LCR95%以上的序列具有相似性 目前认为LCR在减数分裂期间可以导致相邻DNA片段发生不对称的同源重组,结果导致染色体的微缺失、微重复、插入、转位等。 LCR22及其介导的染色体重排 * 22号染色体上的LCR----LCR22s 目前在22q11.2上共发现8个LCR,分别为LCR2、LCR3a、LCR3b、LCR4-8,其总长合计为720kb,占该区间(6Mb)的11.63%。最大的两个LCR为LCR22-2和 LCR22-4,均为240kb左右,其余LCR大小介于1-90kb之间,详见下表。 LCR22及其介导的染色体重排 * 22号染色体上的LCR----LCR22s LCR22及其介导的染色体重排 * LCR22s的内部结构 LCR由基因和假基因构成 参与构成LCR22s的基因和假基因如下 V7-REL GGT-REL GGTLA BCRL POM121L LCR22及其介导的染色体重排 * LCR22s的内部结构 图示DGCR区的LCR22s及其与22q11DS(VCFS)缺失区域的关系 LCR22及其介导的染色体重排 * LCR22s介导的染色体重排 (A)一条正常的染色体和一条发生3Mb微缺失的染色体 (B)一条3Mb微缺失染色体和一条3Mb微重复的染色体 (C)一条正常的染色体和一条发生1.5Mb微缺失的染色体 (D)一条1.5Mb微缺失染色体和一条1.5Mb微重复的染色体 LCR22及其介导的染色体重排 T.Maynard et al., 2002 * 缺失或重复 * CES双着丝粒染色体形成的可能机制 * 易位 * Part 4 相关检测方法 * 1传统细胞遗传学分析 传统细胞遗传学方法即G显带法 由于缺失或重复的片段较小,接近其检测的下限值3Mb,故此法的应用受到限制,只能检出 大于上述缺失的片段 额外的双着丝粒染色体(猫眼综合征) 一些大片段的染色体易位 总体而言检出率只有20%左右 操作简单,费用低廉,各实验室均有条件进行 可以同时观察其他染色体有无异常 临床上常用作筛查的手段 * DGS患者的核型图 * 2 FISH分析 原理:荧光原位杂交,即使用特异性的荧光标记的探针与染色体相应序列相结合,并在荧光灯下照射发光,从而得知相对应的序列是否发生了缺失或重复 高敏感性、高特异性使其成为检测22q11缺失或重复的事实上的金标准,其他方法获得的结果均须得到FISH的证实 耗时长(8天左右)、价格昂贵(250美元/次?)、要求有专用仪器、操作相对复杂、工作量大,限制了其在临床的广泛应用 由于DNA探针的高度特异性,一种探针只能检测一个位点,对于该探针位点以外的缺失可能存在漏诊。 * 用FISH检测22q11区缺失:箭头所指22号染色体发现缺失 * 用FISH检测22q11区缺失:绿色为对照探针,红色为DiGeorge 探针 * 用FISH检测到22q11区重复 SJ Hassed,et al.Clin Genet 2004: 65: 400–404 * 3.1多重PCR 主要是利用缺失重复区的多个微卫星标记、短串联重复序列等进行扩增。 该法不需培养细胞,省时省力,检测成本低 必须有父母的DNA样品作对照,而且由于纯合子基因型的存在,对扩增产物为单一条带者不能明确判别是否缺失 当所取的几个标记或位点不能得出有效结果时,需要选取其他位点,此时工作量和成本均增加。 * 3.2实时荧光定量PCR 原理:在PCR过程中实时采集荧光信号,可在较高精度水平定量检测产物 整个检测过程在24小时内可以完成,操作简单,方便快捷,成本相对低廉 不需要父母的DNA样品作对照,结果比较可靠,其与FISH的相符率达到99.7% 不能检测出染色体嵌合现象和平衡易位 所需的实验仪器价格昂贵 * 3.3 MPLA 使用试剂盒在一次反应中扩增多至50个的靶序列,并对其做半定量测定 快速,敏感,可靠,价格便宜,每个反应只需~£16.50(?) $14(?) 对设备要求不高,热循环仪和测序电泳仪即可 操作方便,出结果快,24小时内 缺点是有假阳性,某些点突变可能阻碍探针结合,被误认为缺失。 * DiGeorge/VCFS 探针试剂盒 由M
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