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PCR污染的产生及防治 分子生物学技术平台讨论会 ——PCR系列之一 2008-2-28 PCR污染的监测 PCR强大扩增能力+检测的敏感性 经30个周期后,特定DNA片段的数量在理论上可增加109倍 极微量的污染便可导致假阳性,尤其对定量造成很大的问题 NTC (No Template Control): 必须设置一个不含模板DNA但含有PCR系统中所有其他成分的对照反应,这一对照管须在准备好所有其他PCR以后才进行吸加。 常见的PCR contamination 常规PCR 荧光定量PCR 引起PCR污染的原因 模板间交叉污染 容器被污染 模板放置时, 由于密封不严溢于容器外 容器外粘有模板而造成相互间交叉污染 模板吸取过程中, 因气溶胶(aerosol)或其他原因引起移液器污染,从而导致交叉污染 引起PCR污染的原因 PCR试剂污染 PCR 试剂配制过程中, 移液器、容器、水等原因造成试剂被PCR 核酸模板污染。 引起PCR污染的原因 PCR产物污染-最主要最常见 PCR 产物拷贝量大,极微量的PCR产物污染, 就可形成假阳性。 移液器吸取PCR产物进行电泳检测,同一支移液器去准备PCR mix PCR产物的气溶胶污染: 一个气溶胶颗粒可能含几万个拷贝 引起PCR污染的原因 实验室中克隆质粒的污染 克隆质粒浓度高, 另外在纯化过程中需用较多的用具及试剂, 其污染可能性也很大 防止PCR污染 首要原则 永远要设置NTC对照 如果不能在污染出现的第一时间发现,会导致严重的后果:一大段时间的数据不可信 准备PCR的移液器要专用 千万不能用吸取PCR产物/克隆质粒的移液器去准备PCR 体系 防止PCR污染 空间: 合理分隔实验区域:将样品的处理、配制PCR反应液、PCR循环扩增及PCR产物的鉴定等步骤分区进行,特别注意样本处理及PCR产物的鉴定应与其它步骤严格分开。 理想状态: 各个区域实验用品及移液器专用,实验前应将该区域用紫外线消毒,破坏残留的DNA或RNA。 防止PCR污染 操作 一旦进入吸加PCR试剂的专用场所并开始工作,就应戴上一副新手套,并应勤于更换。 准备专供自己使用的PCR试剂,分装为小份。不要与样品存放在一起。 选择质量好的Eppendorf管--密封性好且开管不需要太大力气 打开离心管前应先离心,将管壁及管盖上的液体甩至管底部。开管动作要轻,以防管内液体溅出。 实验结束后及时清理台面 选用含UNG(尿嘧啶DNA糖基酶 Uracil-N-Glycosylase)的试剂,有助于防止PCR产物引起的污染。 UNG:50摄氏度,2分钟,作用于含有dU的DNA双链或单链 然后开始PCR反应的预变性步骤,同时UNG失活 出现污染后解决办法 更换试剂 更换新的试剂和水,用确保无污染的移液器分装备用 清洁所有可能的污染源:实验台面、小离心机、冰箱门把手等等 1)实验台面、超净工作台用现配的3%双氧水或10%次氯酸钠溶液擦拭清洁。 2)或者用10%漂白粉溶液擦拭 3) 紫外光照射,照射距离应不超过90 cm,照射时间最好过夜。 实验过程中更加小心,采用前面提到的各种防止污染的办法 参考文献 Kwok S ,Higuchi R. Avoiding false positives with PCR[J ] . Nature ,1989 ,339 (6221) :237 - 238. Mifflin T.E. Setting Up a PCR Laboratory. CSH Protocols; 2007; doi:10.1101/pdb.top14 讨论 设置-RT对照后是不是可以不用设NTC了? 使用了滤芯枪头,是否不需要移液器专用了? …… * * NTC 4 3 2 1 7 6 5 9 8 NTC 气溶胶(aerosol):悬浮于气体介质中粒径一般为 0.001μm~1000μm的固体、液体微小粒子形成的胶溶状态散体系。空气与液体面摩擦时就可形成气溶胶, 在操作时比较剧烈地摇动反应管, 开盖时、吸样时及移液器的反复吸样都可形成气溶胶 防止PCR污染 移液器操作 由于操作时不慎将模板吸入枪内或粘上枪头是一个严重的污染源,因而加样时要十分小心。 1)准备PCR的移液器专用 2)吸样要慢,吸样时尽量一次性完成,忌多次抽吸,切勿形成喷雾,以免交叉污染或产生气溶胶污染。 3)最好在加完所有其他反应成分后才吸加模板。 4)推荐在准备PCR过程中使用滤芯枪头 防止PCR污染 对于不含dU的PCR产
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