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DNA提取常见问题 问题二:DNA降解。 材料不新鲜或反复冻融 未很好抑制内源核酸酶的活性 提取过程操作过于剧烈,DNA被机械打断 外源核酸酶污染 反复冻融 原因 对 策 尽量取新鲜材料,低温保存材料避免反复冻融 液氮研磨或匀浆组织后,应在解冻前加入裂解缓冲液 在提取内源核酸酶含量丰富的材料的DNA时,可增加裂解液中螯合剂的含量,细胞裂解后的后续操作应尽量轻柔 所有试剂用无菌水配制,耗材经高温灭菌 将DNA分装保存于缓冲液中,避免反复冻融 DNA提取常见问题 问题三:DNA提取量少。 实验材料不佳或量少 破壁或裂解不充分 吸附或沉淀不完全 洗涤时DNA丢失 原因 对 策 尽量选用新鲜(幼嫩)的材料 动植物要匀浆研磨充分;G+菌、酵母裂解前先用生物酶或机械方式破壁。高温裂解时,时间适当延长(对于动物细胞、细菌可增加PK的用量)。 增加吸附的时间,或低温沉淀 小心操作 RNA提取专题 第二部分:RNA提取及常见问题分析 第一部分:RNA提取方法简介 分离提纯RNA的目的 分析不同发育时期基因的表达状况 获得新基因 研究基因的拼接 分析相应的蛋白产物 * DNA和RNA提取方法及原理 第二部分:DNA提取常见问题分析及对策 DNA提取专题 第一部分:DNA提取方法简介 前言 DNA是遗传信息的载体,是最重要的生物信息分子,是分子生物学研究的主要对象。为了进行测序、杂交和基因的表达,获得高分子量和高纯度的DNA是非常重要的前提。 DNA提取原则 保证DNA结构的完整性 纯化后不应存在对酶有抑制作用的物质 排除有机溶剂和金属离子的污染 蛋白质、多糖、脂类等降低到最低程度 排除其他核酸分子的污染 DNA提取的几种方法 染色体DNA的提取 CTAB法 SDS法 其它 DNA提取的几种方法 非染色体DNA的提取 质粒DNA的提取 碱裂解法 煮沸法 线粒体、叶绿体DNA的提取 差速离心结合SDS裂解法 基因组DNA- CTAB法 CTAB法原理(植物DNA提取经典方法) CTAB(hexadecyltrimethylammonium bromide,十六烷基三甲基溴化铵),是一种阳离子去污剂,可溶解细胞膜,并与核酸形成复合物。 该复合物在高盐溶液中(0.7mol/L NaCl)是可溶的,通过有机溶剂抽提,去除蛋白、多糖、酚类等杂质后加入乙醇沉淀即可使核酸分离出来。 注:CTAB溶液在低于15℃ 时会形成沉淀析出,因此在将其加入冰冷的 植物材料之前必须预热,且离心时温度不要低于15℃。 CTAB提取缓冲液的经典配方 Tris-HCl (pH8.0)提供一个缓冲环境,防止核酸被破坏; EDTA螯合Mg2+或Mn2+离子,抑制DNase活性; NaCl 提供一个高盐环境,使DNP充分溶解,存在于液相中; CTAB溶解细胞膜,并结合核酸,使核酸便于分离; β-巯基乙醇是抗氧化剂,有效地防止酚氧化成醌,避免褐变,使酚容易去除 基因组DNA- CTAB法 CTAB提取缓冲液的改进配方 PVP(聚乙烯吡咯烷酮)是酚的络合物,能与多酚形成一种不溶的络合物质,有效去除多酚,减少DNA中酚的污染;同时它也能和多糖结合,有效去除多糖。 CTAB法流程图 植物材料 裂解液 上层溶液 液氮研磨 抽提 细胞裂解 干燥溶解 离心洗涤 酒精沉淀 DNA溶液 基因组DNA- CTAB法 SDS法原理 基因组DNA-SDS法 SDS是一种阴离子去垢剂,在高温(55~65℃)条件下能裂解细胞,使染色体离析,蛋白变性,释放出核酸; 提高盐(KAc或NH4Ac)浓度并降低温度(冰浴),使蛋白质及多糖杂质沉淀,离心后除去沉淀; 上清液中的DNA用酚/氯仿抽提,反复抽提后用乙醇沉淀水相中的DNA。 SDS法流程图 (以动物组织为例) 动物组织 细胞裂解 上层溶液 组织匀浆 抽提 干燥溶解 离心洗涤 酒精沉淀 DNA溶液 基因组DNA-SDS法 基因组DNA-其它方法 物理方式:玻璃珠法、超声波法、研磨法、冻融法 化学方式:异硫氰酸胍法、碱裂解法 生物方式:酶法 根据细胞裂解方式的不同有: 基因组DNA-其它方法 吸附材料结合法: 根据核酸分离纯化方式的不同有: 硅质材料 阴离子交换树脂 磁珠 高盐低pH值结合核酸,低盐高pH值洗脱。 快捷高效。 低盐高pH值结合核酸,高盐低pH值洗脱。 适用于纯度要求高的实验。 磁性微粒挂上不同基团可吸附不同的目的物,从而达到分离目的。 基因组DNA-其它方法 浓盐法: 有机溶剂抽提法: 密度梯度离心法: 利用RNP和DNP在盐溶液中溶解度不同,
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