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法医病理学 组织切片制作 HE染色切片 一、目的要求? 掌握取材、固定、水洗、脱水、透明、浸蜡与包埋,切片制作。 (一)取材 1.取材快,新鲜,防止组织腐败。 2.取材刀锋利,垂直地切取,严禁挤压或用钳镊钳夹,以免使组织或细胞变形造成人为的破坏。 3.取材大小,lcm~3cm×1cm~2cm×0.3cm~0.5cm。材料过大在短时间内不易固定透,影响效果。 (二)方法: 1. 实质器官 心脏:心房、瓣膜、心室。可分别取病变部位带正常组织。可单独取心室肌,乳头肌,3~5块。 肺脏:左右两肺(五个肺叶);可根据病变需要决定取材块数,特殊情况下为区别在不同肺叶上取材,可用形状做标志在记录时记清楚,5~7块。 肾脏:取材包括被膜、皮质、髓质和肾盂,应区别左右肾,2~4块。 胰腺:取胰体部,必要时加取胰头、胰尾,2块。 肝脏:取长方形或三角形,2~3块。 脾脏:取材带被膜,2~3块。 脑:全脑(桥脑、延脑、小脑)、脊髓颈段及脉络丛,十一块,或根据具体情况决定: ①额极;②前后中央回;③海马;④内囊;⑤丘脑;⑥枕叶;⑦脉络丛;⑧桥脑;⑨延髓;⑩中脑; ?小脑。取材时要带上软脑膜、脑室膜或软脊膜因此刀要锋利。需要时取脊髓。 垂体:前、中、后叶和垂体柄,从前向后横切。 2.管腔脏器: 取材时注意方向,取管腔脏器的全层构造。 大肠、小肠:应考虑环行皱襞,沿肠管的长轴取(纵切)。 食管、气管:横切面为宜。 胃:常规取胃底。 取材后应将被膜面铺在滤纸上,然后入固定液内,防止或减少组织受压变形与收缩。 有病变的部位,应附带周围正常组织取材。 二、固定 (一)意义:是做好切片的重要步骤之一,如果首次组织固定不良,再重新固定效果不佳。 检材固定的关键:取材后尽可能地及时地将所取的材料进行固定,以防止其“死后”变化的进展,尽力使组织接近于生前状态。为了防止组织结构及成份的破坏和溶解消失,需要使其转变为不溶性物质,有利于组织结构保存--固定的基本意义。 固定的目的: 1. 阻止死后变化,防止组织的自溶与腐败。 2.保存组织的结构及成份。 3.媒染作用,使不同的组织成份对染料有不同 亲和力,使细胞各部易于受色。 4.能使组织硬化,为制作薄切片奠定基础。 注意:材料块不能过大,固定器皿不易过小,固定液量不易过少,应是固定材料体积的20一30倍。 (二)固定液: 根据检验目的不同选择不同种类固定液,如糖原检查:不含水的固定液;电镜检查:锇酸固定液等;HE染色:甲醛。 固定液:用以固定组织的药剂。 固定液分类:单纯固定液,由一种药剂组成;混合固定液(或复合),由二种以上的药剂组成。 1.选择固定液的标准: ①具有强的穿透力,固定均匀,能迅速渗透到组织内部使组织细胞结构保持生活状态。 ②不使组织过度收缩与膨胀而变形。 ③能迅速使组织中的蛋白质、糖、脂肪等物质凝固成为不溶性物质。 ④使组织达到一定的硬度便于切片制作。 ⑤价格便宜,易购买,配制方便。 2.单纯固定液 乙醇(酒精)、甲醛(福尔马林)、重铬酸钾、苦味酸、锇酸、丙酮、冰醋酸 (1)乙醇(酒精)(alcohol) 优点: ①价格低,易购买,易溶于水,使用方便,95%浓度,无水乙醇100%; ②市售有两种:100%;95%; ③能硬化组织起固定作用; ④也是一种最常用的脱水剂。 固定用浓度在70%~80%,酒精浓度愈大组织收缩愈严重,浓度过低起不到固定作用。 缺点: ①穿透力小,由于被固定的组织表面硬化,固定液不容易渗透到组织中去,所以用乙醇固定的组织材料要小。 ②使组织严重收缩。 ③由于酒精能沉淀白蛋白、球蛋白和核蛋白,核蛋白的沉淀物易溶于水,使细胞核核色不佳。。 ④溶解脂肪、血红蛋白和多种色素,脂肪染色必须制作冰冻切片。 2.甲醛:(福尔马林)(formalin) 最常用的固定液,一种还原剂,无色透明极易挥发有强烈刺激性气味的液体,不能与氧化剂混使用。可应用于组织学、组织化学、免疫组织化学等染色,最好用时现配。 商品甲醛:37%~40%甲醛水溶液。 固定液的浓度:4%~8%(习惯上称为10%或20%的福尔马林)。 固定时间:常温下固定24h~48h。快速固定,可加温到70℃~80℃或者加温煮沸10min即可。快速固定,组织块不宜过厚或过大,缺点是组织收缩较严重。 固定液配制:甲醛1份与9份自来水混合即为10%(4%)浓度的甲醛固定液。 优点:①渗透力较强;②组织收缩小;③细胞核染色较好。 缺点: ①质量较差的formalin在低温下久存容易产生一种白色的沉淀物称“三聚甲醛”(付醛),经氧化成为甲酸而使溶液呈酸性,影响细胞核染色。可在
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