酶活测定基本方法.docVIP

抗氧化酶液（SOD、CAT、APX、POD）可以统一提取 称取叶片0.5g，加5ml（1+4）提取液PH7.8 Pbs，冰浴研磨，12000g，4℃，20min，上清液即为粗酶提取液。同时酶液可用于测定可溶性蛋白含量和超氧阴离子自由基的含量！注意CAT反应液和APX反应液要现配现用！ 注：粗酶提取液要全部转移；加入石英砂后离心需配平 1.SOD(超氧化物歧化酶)测量 取透明度好的指形管，按下表加入各溶液： 试剂（酶） 用量（ml） 0.05M磷酸缓冲液（PH7.8） 1.5 65mM Met溶液 0.3 500uM NBT溶液 0.3 100uM EDTA-Na2 0.3 200uM核黄素 0.3 酶液 0.1（对照管加缓冲液） 蒸馏水 0.5 总体积 3.3 混匀后将一支对照管置暗处作空白对照，其余各管于4000lx光下反应20-30min，反应结束后，以不照光的对照管为空白，560nm测定OD值。按下式计算SOD活性。 SOD总活性=[(ACK-AE)×V]/[ ACK×1/2×W×a] SOD比活力=SOD总活性/蛋白质浓度 SOD总活性以每克鲜重每单位表示：比活力单位以酶单位/mg蛋白表示 ACK—照光对照管的消光度值 AE—样品管的消光度值 V—样液总体积（ml） a—测定时样品用量（ml） W—样重（g） 蛋白质浓度单位为：mg蛋白/g样重。 【试剂配制】 磷酸缓冲液配制： 母液：A：Na2HPO4?12H2O 36g，稀释至500ml B：NaH2PO4?2H2O 15.92g，稀释至500ml 提取液配制：取0.0186gEDTA（0.1mM），5g PVP （1%（g/ml））,用磷酸缓冲液（PH7.8）稀释至500ml。 PH7.8 Pbs配制：A 114.35ml + B 10.625ml，定容至500ml。 PH7.0 Pbs配制：A 152.5ml（76.25ml）+ B 97.5ml（48.75ml）稀释至1000ml（500ml）。 65 mmol/L Met: 取0.97g Met 用磷酸缓冲液（PH 7.8）定容至100ml； 500 umol/L NBT:取0.0409g NBT用磷酸缓冲液（PH 7.8）定容至100ml（避光保存）； 100 umol/L EDTA-Na2: 0.03721g（0.0186g）EDTA-Na2磷酸缓冲液（PH 7.8）定容至1000ml（500ml）； 200 umol/L 核黄素：0.0753（0.03765）g核黄素磷酸缓冲液（PH 7.8）定容至1000ml（500ml）；（现用现配） 注：若要抑制Cu-Zn/SOD的活性，可加入30mM的KCN0.3ml；若要抑制Cu-Zn/SOD Fe-SOD的活性，可加入50mM的H2O2 （0.52ml 30%的H2O2稀释至100ml） 0.3ml； 2.CAT（过氧化氢酶） CAT反应液：0.28ml 30%的H2O2用pH7.0的磷酸缓冲液稀释至250ml。（H2O2为10mM）。 0.1 ml 酶提取液+ 2.9 ml CAT 反应液，240nm比色，（10s∕20s）。 3.APX 如果是长期保存的材料，则提取液为0.186g EDTA，0.7418g ASA，用pH7.0的缓冲液定容到500ml，此处作用是防止APX失活，但是新鲜材料则两种提取方法对后来结果影响差异不明显。 APX反应液：11.2ul 30%H2O2+0.04718gASA，磷酸缓冲液（pH7.0）定容到500ml。（此反应液必须现配现用） 0.1 ml 酶提取液+2.9 ml APX反应液，290nm比色（0~40s）。 4.POD（过氧化物酶） POD反应液：0.125ml愈创木酚+0.2553ml 30%H2O2，用pH7.0的磷酸缓冲液稀释至250ml。 20ul酶提取液+3ml POD反应液，470nm比色（0s/30s）。 5.可溶性蛋白测定 0.1 ml酶提取液（测SOD的酶提取液）+5ml考马斯亮蓝G250，反应2min，595nm比色，按下式计算蛋白质含量： 蛋白质含量（mg/g鲜重）=（C×V/a）/W C—查标准曲线所得每管蛋白质含量（mg） V—提取液总体积（ml） a—测定所取提取液体积（ml） W—样品重（g） 考马斯亮蓝G250：0.1g考马斯亮蓝G250溶于50ml 90%乙醇中，加入85%磷酸100ml，蒸馏水定容至1000ml。（配好后最好过滤） 6.MDA含量测定 称取剪碎的材料0.5g（需3个重复，也可直接取1.5g,然后再分3个样），用5ml（2+3） 10%TCA和少量石英砂研磨，10000g离心10min，上清液为提取液。取提取液2ml（对照加2ml蒸馏水），加入