CHO细胞表达系统与酵母细胞表达系统比较.doc

CHO细胞表达系统与酵母细胞表达系统比较 CHO细胞表达系统与毕赤酵母表达系统是当前发展前景看好的两个表达系 统，为了能够更加直观地对两个表达系统有一定的认识，特意在此篇中对两个表达系统作一定的比较，从而能够更进一步的对两个表达系统有更深的了解 1．CHO细胞表达系统 （ 1）优点 CHO细胞属于成纤维细胞，既可以贴壁生长。也可以悬浮生长。目前常用 的 CHO细胞包括原始 CHO和二氢叶酸还原酶双倍体基因缺失型 (DHFR-突)变株 CHO。近年来，为降低生产成本和减少血制品带来的潜在危害性，动物细胞生 产开始使用无血清培养基 (SFM)，但 SFM往往导致细胞活力差，贴壁性差，分泌 外源蛋白的能力差等缺点。另有研究者尝试将类胰岛素生长因子 IGF基因和转铁蛋白基因转入 CHO细胞获得能自身分泌必需蛋白的 “超级 CHO”，无需在培养基中转铁蛋白和胰岛素，细胞可在 SFM中生长良好。与其他表达系统相比，CHO表达系统具有以下的优点： (1)具有准确的转录后修饰功能，表达的蛋白在分子结构、理化特性和生物学功能方面最接近于天然蛋白分子； (2)既可贴壁生长，又可以悬浮培养，且有较高的耐受剪切力和渗透压能 力； (3)具有重组基因的高效扩增和表达能力，外源蛋白的整合稳定； (4)具有产物胞外分泌功能，并且很少分泌自身的内源蛋白，便于下游产物分离纯化； (5)能以悬浮培养方式或在无血清培养基中达到高密度培养。且培养体积能达到 1000L以上，可以大规模生产。 （ 2）存在的问题 1 / 4 在过去的几十年里，人类对动物细胞的培养技术进行了大量的研究开发，取得了很大进展，但是利用 CHO细胞表达外源基因的技术水平尚不能满足生物药品的开发和生产的要求，目前上游工作中主要存在以下问题： ① 构建的重组 CHO细胞生产效率低，产物浓度亦低； ② 某些糖基化表达产物不稳定，不易纯化； ③ 重组 CHO细胞上游构建与下游分离纯化脱节，主要表现在上游构建时着重考虑它的高效表达，而对高教表达的产物是否能有效地提取出来，即分离纯化过程考虑较少； ④ 重组细胞培养费用昂贵，自动化水平低下。 2．xx 酵母细胞表达系统 （ 1）特点 自 1987 年 Gregg等首次在毕赤酵母中表达乙型肝炎表面抗原 (HBsAg)到 1995 年，已有四十多种外源蛋白在毕赤酵母宿主菌中获得表达。而最近几年每 年报道的在毕赤酵母中表达的外源基因就有几十种，且一年比一年多，与其它表达系统相比，毕赤酵母表达系统具有以下优势： 1）含有特有的强有力的 AOX（醇氧化酶基因）启动子，用甲醇可严格地调 控外源基因的表达； 2）表达水平高，即可在胞内表达，又可分泌型表达。毕赤酵母中，报道的最高表达量为破伤风毒素 C为 12g/l ，一般大于 1g/l。绝大多数外源基因比在细菌、酿酒酵母、动物细胞中表达水平高。一般毕赤酵母中外源 基因都带有指导分泌的信号肽序列，使表达的外源目的蛋白分泌到发酵液中，有利于分离纯化； 3）发酵工艺成熟，易放大。已经有大规模工业化高密度生产的发酵工艺， 且细胞干重达 100g/l 以上，表达重组蛋白时，已成功放大到 100 升； 4）培养成本低，产物易分离。毕赤酵母所用发酵培养基十分廉价，一般碳 源为甘油或葡萄糖及甲醇，其余为无机盐，培养基中不含蛋白，有利于下游产品分离纯化；而酿酒酵母所用诱导物一般为价格较高的半乳糖； 2 / 4 5）外源蛋白基因遗传稳定。一般外源蛋白基因整合到毕赤酵母染色体上，随染色体复制而复制，不易丢失； 6）作为真核表达系统，毕赤酵母具有真核生物的亚细胞结构，具有糖基化、脂肪酰化、蛋白磷酸化等翻译后修饰加工功能。 （ 2）存在的问题 尽管甲醇营养型酵母表达系统被认为是极具发展前景的真核表达系统，许多表达产物已用于临床治疗及预防，但它并不是万能的表达系统，作为一种新的表达系统，和其它表达系统一样，巴氏系统也并非尽如人意，同样有其局限性，仍然存在这样或那样的缺陷或不足。如分泌产物的不均一性，包括聚合体的存在，发酵周期较长，易污染，且长时间的发酵不利于外源蛋白的表达；利用易燃的甲醇做原料，表达产物的卫生安全性需要考虑；筛选药物价格昂贵也给生产应用带来局限；低表达或不表达的例子也在增多。 信号肽加工不完全，修饰功能欠完善以及内部降解等现象，给外源蛋白的纯化和工业化带来了困难。而且，与安全可靠、背景清楚的酿酒酵母相比，巴氏系统还有其它缺点： (1)分子生物学的研究基础差，要对其进行遗传学改造困难较大。 (2)不是一种食品微生物，发酵时又要添加甲醇，所以，要用它来生产药品或食品还没有被广泛接受。 (3)发酵虽然能达到很高的密度，但是发酵周期一般较长。 其中最重要的一个缺陷就是分泌表达的蛋白在培养基中被自身分泌的蛋白酶降解，由于甲醇酵母多采