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一、脲酶测定 (苯酚钠 -次氯酸钠比色法 )
脲酶是对尿素转化起关键作用的酶, 它的酶促反应产物是可供植物利
用的氮源,它的活性可以用来表示土壤供氮能力。
1、试剂配制:
( 1)
pH6.7 柠檬酸盐溶液:取
368g 柠檬酸溶于 600mL
蒸馏水中,另取 295g 氢氧化
钾溶于水,再将两种溶液合并,用
1N 氢氧化钠将
pH 调至 6.7,并用水稀释至
2L。
( 2)
苯酚钠溶液: 称取 62.5g 苯酚溶于少量乙醇中,
加 2mL 甲醇和 18.5mL 丙酮, 后
用乙醇稀释至 100mL ( A 液),保存再冰箱中。称取
27g 氢氧化钠溶于 100mL
水中( B 液),保存于冰箱中。使用前,取
A 、B 两液各 20mL 混和,并用蒸馏
水稀释至 100mL 备用。
( 3)
次氯酸钠溶液:用水稀释制剂至活性氯的浓度为
0.9%,溶液稳定。
( 4)
10%尿素溶液: 10g 尿素溶于 100mL 水中。
( 5)
N 的标准溶液: 精确称取
0.4717g 硫酸铵溶于水稀释至 1L ,则得 1mL 含 0.1mgN
的标液,再将此液稀释
10 倍制成氮工作液(
0.01mg/mL )。
标准曲线绘制 :分别取 0、0.5、1.5、2.5、3.5、4.5、5.5、6.5mL 氮工作液置于 25mL 刻度试
管中,加蒸馏水至 10mL ,再加 2mL 苯酚钠溶液和
1.5mL 次氯酸钠溶液, 随加随摇匀, 20min
后显色,定容
25mL 。 1h 内再分光光度计上于
578nm 处比色。
管号
1
2
3
4
5
6
7
8
工作液 /ml
0
0.5
1.5
2.5
3.5
4.5
5.5
6.5
苯酚钠 /ml
2
2
2
2
2
2
2
2
次氯酸钠 /ml
1.5
1.5
1.5
1.5
1.5
1.5
1.5
1.5
蒸馏水定容
25
25
25
25
25
25
25
25
氨态氮量 / μg
0
55
15
25
35
45
55
65
A 578-1
0
0.054
0.148
0.263
0.339
0.433
0.514
0.569
A 578-2
0
0.052
0.159
0.264
0.371
0.422
0.507
0.556
平均
0
0.053
0.154
0.264
0.355
0.428
0.511
0.563
70
y = 113.58x - 2.6439
60
2
50
R = 0.9926
40
30
20
10
0
0
0.2
0.4
0.6
2、操作步骤
( 1)称取 2.5g土置于 25mL 刻度试管中 , 加 0.5mL 甲苯处理 ,加塞塞紧轻摇 15min; 往瓶中加入 2.5mL10% 尿素液和 5mL 的柠檬酸盐缓冲液 (pH 6.7),仔细混匀。在 37℃恒温箱中培养 3h。(当脲酶活性为 3~80 微克 NH3-N 时,本法能获得可靠的结果。 若脲酶活性小于 3 微克,培养时间需增至 24h)。
2)然后用热至 38℃的蒸馏水稀释至刻度 (甲苯应浮在刻度以上 ),摇荡 ,将悬液过滤。 对每一土样, 设置用水代替基质的对照。对整个实验,进行无土壤基质的对照,以检验实验的
纯度。
( 3)取滤液
0.5mL
置于
25mL
刻度试管中
,用蒸馏水稀释至
5mL, 然后加入
2mL
苯酚钠
溶液 ,并立即加入
1.5mL
次氯酸钠溶液,加入每一试剂后
,立即将混合物摇匀
,20min后
,将
混合物稀释至刻度
,
4)在波长 578nm处测定吸光值。脲酶活性以样品所得的吸光值减去对照样品吸光值之差 ,根据标准曲线求出氨态氮量。
3、结果计算
以 3/24 小时后 1g 土壤中 NH 3- N 的质量( mg)表示脲酶活性( Ure )
Ure= a· V · n/m
式中: a 为由标准曲线求得的 NH 3- N 浓度( mg/mL ); V 为显色液体积( 50mL ) 0.5; n
为分取倍数 50; m 为烘干土重( g) 2.5。
注意事项:
1. 每一个样品应该做一个无基质对照, 以等体积的蒸馏水代替基质, 其他操作与样品实验
相同,以排除土样中原有的氨对实验结果的影响。
整个实验设置一个无土对照,不加土样,其他操作与实验相同,以检验试剂纯度和基质自身分解。
如果样品吸光值超过标曲的最大值,则应该增加分取倍数或减少培养的土样。
二. 过氧化氢酶测定 (紫外分光光度法 )
试剂配制
0.3%过氧化氢溶液:按 1:100 将 30%H 2O2 用水稀释
b. 1.5N
硫酸:取
42mL
浓硫酸,稀释后定容至
500mL
c. 0.02
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