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《肺癌小样本取材相关问题的中国专家共识》荽点
肺癌是全球范围内发病率和病死率最高的恶性肿瘤。75%的肺癌患者 在初诊时已是中晚期,无法进行手术根治。对晚期肺癌患者,应尽可能采 用微创方法确立诊断并进行准确病理诊断、分子分型及分期,以指导下一 步治疗。近80%的中晚期肺癌患者是通过小样本活检组织来确诊。目前, 肺癌治疗已进入精准治疗时代,方案及药物的选择是根据其组织学亚型和 分子学检测培果共同制定的。因此,获得足量、优质的样本,以进行准确 的组织学和分子学诊断非常必要,这需要多学科密切协作。此夕卜,还可对 部分已确诊的肺癌患者进行再次活检或多部位活检,以明确其病情演变及 分子学改变。本共识旨在提高我国肺部肿瘤诊疗医护人员对小样本取材重 要性的认识,规范临床采用经支气管镜或经皮肺穿刺活检等肺部取材方式 的操作流程,在显者提高取材效率与样本质量的基础上,降低各类并发症 的发生,促进各项相关技术在国内的推广与昔及,推进我国肺癌微创诊断 及精准治疗与国际接轨,以提高肺癌早期诊断率,改善中晚期患者治疗效 果与预后,造福于患者。
本共识采用问答形式,对临床实际操作中常见的关键性问题进行分类 解答。
-、支气管肺泡灌洗(BAL )
BAL部位如何选择?
无论是弥漫倒市疾病,还是局灶倒市部病变,首先推荐根据影像学(只要 是CT )表现选择BAL操作部位。一般来讲,肺泡磨玻璃阴影、多数结节 或占位性病灶所在叶段,或是间质性病变,如网格状阴影等较明显区域是 最为合适的部位。BAL操作前6周内的高分辨率CT影像是较为理想的参 考依据。
BAL次数与支气管肺泡灌洗液(BALF )总量多少合适?
一般使用20J或60ml的注射器灌注37。(:左右(或室温)的0.9%无菌氯 化钠溶液,推荐灌注3 ~ 5次,总量一般为100 ~ 200ml。
BALF回收率应为多少?
一般情况下,肺中叶或舌叶的BALF回收率约为灌入量的40% ~ 70% ,肺 下叶或其他肺叶至少为30%以上。用于BALF细胞分类计数的回收液一般 需达到10 ~ 20ml,至少5ml。
如何获得理想的BALF回收率?
支气管镜应嵌紧支气管开口处,以免液体外漏。每次灌注液体后,随即用 注射器负压吸引回收,也可直接通过支气管镜吸引至无菌容器中。吸引可 导致气道塌陷和气道黏膜的损伤,引起BALF回收量减少,出血则可改变 BALF的性状,因此吸引时负压的压力不能过大、过猛。最佳吸力应由操 作者在可视情况下控制,—般以25?100mmHg的负压为宜。
获得BALF后如何转运?
尽量在1h内将BALF送检。⑴新鲜的BALF可直接用于实验室检测;⑵ 如果转运时间超过30min ,应在4。<2条件下(置于冰上)转运;③若转运 时间超过1h ,建议先将BALF进行低速离心( 250 ~ 300g , 10min ),保 持细胞完整性,然后将细胞沉渣重新悬浮于特定的细胞培养液中
(MEM + 25mmol/L HEPES 或 RPMI1640+25mmol/L HEPES) , 4。(:保 存,24h内进行检测;(4)若无离心条件,可将MEM或RPMI加入灌洗液 中,4。(:保存,12h内检测。BALF不可冷冻或用干冰转运。
BALF检测前如何处理?
推荐BALF处理步骤:⑴先用棉纱布或尼龙网眼对BALF进行过滤,以减 少支气管黏膜及上皮细胞污染;必要时可使用二硫苏糖醇化解残存的少量 黏液;⑵测量BALF总体积;⑶500g离心10min ;⑷将离心后的BALF 上清液冷冻保存以供后续分析。
常见BALE细胞分类计数异常如何界定?
⑴对BALF进行细胞分类技术须经细胞离心和染色(Wrighe-Giemsa或 May-Grunwald-Ciemsa法)后逬行,每次至少需要计数400个细胞。 ⑵健康非吸烟成人的BALF细胞分类计数参考值:肺泡巨噬细胞>85% , 淋巴细胞10%~15%( CD4+/CD8 + =0.9~2.5),中性粒细胞$3% ,嗜酸 性粒细胞比例超过1% ,或T大细胞比例超过0.5% ,分别提示可能存在相 关疾病。⑶若BALF中存在鳞状上皮细胞,提示可能被上呼吸道分泌物污 染;若出现大量支气管上皮细胞,提示BALF并非来自远端气腔。
二、经支气管镜活检
1-行经支气管镜腔内活检时,组织取材量多少为宜?
我们建议,若无快速现场评估(ROSE),在病情允许的情况下,至少行3 ~ 4次活检,以保证所得肺组织样本能够进行病理及分型诊断,剩余样本可 适当保存,以供额外的分子学诊断等用途。
对肺部周围型病灶,如何选择合适的活检工具?
对肺部周围型病灶,与活检及支气管刷相比,X线透视下经支气管针吸活 检对恶倒中瘤的诊断具有更好的敏感性。另外,多种活检方法联合应用的 诊断效能要优于单一的活检方法。针吸活检在恶性
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