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组织 RNA提取
样本总体积不能超过
一、准备工作
Trizol 体积的 10%
二、步骤
(一 ) TRIzol 法提取总 RNA
组织 (约 100g)+ 1ml TRIzol
↓
匀浆 (冰上预冷 )(转 1.5ml EP 管)
↓
颠倒混匀,室温 5 分钟
↓
加 0.2ml 氯仿
↓
颠倒混匀
15 秒,室温 2~ 3 分钟
异丙醇使 RNA 变性,
↓
离心: 4℃, 12000rpm , 10 分钟
沉淀
↓
转上层水相 (约 400~ 500μl) 到 1.5ml EP 管
注:上层 RNA ;中层蛋
↓
白;下层 DNA
加等体积异丙醇 (约 400~ 500μ l) ,混匀,冰浴
10 分钟
注:异丙醇- 20℃预冷
↓
离心: 4℃, 12000rpm , 15 分钟
↓
弃上清
↓
加 1ml 75% 乙醇
↓
离心: 4℃, 8000rpm , 5 分钟
↓
弃上清
↓
加 1ml 75% 乙醇
↓
离心: 4℃, 8000rpm , 5 分钟
↓
弃上清
↓
加入 30~ 40μ l DEPC 水
↓
立即保存于- 70℃冰箱中或立即用于逆转录
测浓度: 加去离子水稀释 100~ 600 倍测 260 值
1
RNA 浓度= OD260 值×稀释倍数 (100~ 600)× 40/1000
上样量= 5μ g/RNA 浓度 加 DEPC 水补足 10μl
(二 )逆转录 (RT) (25μl 体积 )
1、配制混合物一 (0.5ml EP 管 )
模板 RNA5 μ g+DEPC 水补足 10μ l
↓
变性: 80℃水浴 × 5 分钟,迅速冰浴
2、配制混合物二 (0.5ml EP 管 )(每份 )
Oligo dT( 引物 ) 0.5μ l
5× Buffer 5μ l
20mM dNTPs 2μ l
0.1M DTT 1μ l
RNA 酶抑制剂 0.5μ l
M-MLV( 反转录酶 ) 1μ l
DEPC 水 5μ l (补至 15μ l)
3、将混合物二加入已变性的混合物一中,混匀→ 37℃水浴 × 90 分钟
4、得 25μ l cDNA 放置于- 20℃冰箱中。
提取总 RNA ,取 4u1RNA 溶液在 1.5% 的琼脂糖凝胶上电泳,如图示 28S, 18S 和 5S 三
条带清晰, 比例适当。 所有标本总 RNA 进行紫外分光光度计检测, A260/280 比值在 1.8-2.0 之间,表明 RNA 无明显降解,无明显 DNA 污染,质量符合实验要求。
DEPC 水的制备
DEPC 水:泡实验器具的 DEPC 水的配制: 1000ml 双蒸水中加 1mlDEPC ,放在 1000ml 容量瓶
中静置 4 小时后备用。 配 75%乙醇的 DEPC 水的配制: 100ml 盐水瓶内装 40ml 双蒸水,加 40ulDEPC ,
℃过夜,送至高压。
2
细胞 RNA提取
(一 ) TRIzol 法提取总 RNA
PBS(2ml) 洗 2 遍细胞
↓
细胞+ 1ml TRIzol ( 消化,反复吹打 ) 注: 6 孔板:加 0.5ml ;
↓ 1 培养瓶:加 1ml TRIzol
收集后转 1.5ml EP 管
↓
加 100μl 氯仿
↓
颠倒混匀 15 秒,室温 2~ 3 分钟
↓
离心: 4℃, 12000rpm , 15 分钟
↓
转上层水相 (约 400~ 500μl) 到 1.5ml EP 管 注:上层 RNA ;中层蛋
↓ 白;下层 DNA
加等体积异丙醇 (约 400~ 500μ l) ,混匀,冰浴 20 分钟 注:异丙醇- 20℃预冷
↓
离心: 4℃, 12000rpm , 15 分钟
↓
弃上清
↓
加 0.5ml 75% 乙醇
↓
离心: 4℃, 5000rpm , 5 分钟
↓
弃上清
↓
加 0.5ml 75% 乙醇
↓
离心: 4℃, 5000rpm , 5 分钟
↓
弃上清
↓
加入 0.5ml 75% 乙醇,加入 10μ l 左右 DEPC 水
↓
立即保存于- 70℃冰箱中或立即用于逆转录
测浓度: 加去离子水稀释 50~ 100 倍测 260 值 注: RNA 浓度为 0.4~
RNA 浓度= OD260 值×稀释倍数 (50~100)× 40/1000 0.6 之间为佳
上样量= 5μ g/RNA 浓度 加 DEPC 水补足 10μl
3
(二 )逆转录 (RT) (25μl 体积 )
1、配制混合物一 (0.5ml EP 管 )
模板 RNA5 μ g+DEPC 水补足 10μ l
↓
变性: 80℃水浴 × 5 分钟,迅速冰浴
2、配制混合物二 (0.5ml EP 管 )(每份 )
Oligo dT 0.5
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