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1、引物
弓物是PCR特异性反应的关键,PCR产物的特异性取决于弓曲与模板DNA互 补的程度。理论上,只要知道任何一段模板DNA序列,就能按其设计互补的寡核首 酸链做引物,利用PCR就可将模板DNA在体外大量扩增。
设计引物应遵循以下原则:
引物长度:15-30bp,常用为20bp左右。
引物扩增跨度:以200-500bp为宜,特定条件下可扩增长至10kb的片段。
引物碱基:G+C含量以40-60%为宜,G+C太少扩增效果不佳,G+C过多 易出现非特异条带。ATGC最好随机分布,避免5个以上的瞟吟或唸口定核昔酸的成串 排列。
避免引物内部出现二级结构,避免两条引物间互补,特别是 3,端的互 补,否则会形成引物二聚体,产生非特异的扩增条带。
引物3,端的碱基,特别是最末及倒数第二个碱基,应严格要求配对,以避 免因末端碱基不配对而导致PCR失败。
⑥引物中有或能加上合适的酶切位点,被扩增的靶序列最好有适宜的酶切位 点,这对酶切分析或分子克隆很有好处。
0Q⑦引物的特异性:引物应与核酸序列数据库的其它序列无明显同源性。引物 :每条引物的浓度?lumol或10?100pmol,以最低引物量产生所需要的结 果为 好,弓物浓度偏高会引起错配和非特异性扩增,且可增加引物之间形成二聚体的机 会。
0Q
2、酶
目前有两种Taq DNA聚合酶供应,一种是从栖热水生杆菌中提纯的天然酶,另 一种为大肠菌合成的基因工程酶。催化一典型的 PCR反应约需酶量(指总
反应体积为100ul时),浓度过高可引起非特异性扩增,浓度过低则合成产物量减 少。
3、dNTP
dNTP的质量与浓度和PCRT增效率有密切关系,dNTP粉呈颗粒状,如保存不
当易变性失去生物学活性。dNTP溶液呈酸性,使用时应配成高浓度后,以1M NaOH或1M Tris。HCL的缓冲液将其PH调节到?,小量分装,-20C冰冻保存。 多次冻融会使dNTP降解。在PCR反应中,dNTP应为50?200umol/L,尤 其是注意 4种dNTP的浓度要相等(等摩尔配制),如其中任何一种浓度不同于其它几种时
(偏高或偏低),就会引起错配。浓度过低又会降低PCR产物的产量。dNTP能与 Mg2+结合,使游离的Mg2+浓度降低。
dNTP储存液:dNTP溶于pH为的NaOH贮存液中,最初的贮存液可稀释到 10mol/L,分装后存放在-20C冰箱中。dNTP使用浓度在20?200卩mol/之间。4种 dNTP?必须等浓度配合以减少错配误差。dNTP使用浓度:在PCF反应中,使用低 dNTP浓度,?可减少非靶位置启动和延伸时的核昔酸错误掺入。一般可根据靶序列的 长度和组成来决定最低dNTP浓度。例如在100卩I?勺反应体系中,4种dNTP的浓 度为20卩mol/L可基本满足合成卩g DNA或?10pmol/L?的400bp序列。使用低 dNTP浓度侮种dNTP浓度为2卩mol/L)能够高度灵敏地⑺?扩增ras基因 点突变的 等位基因。
4、模板
模板核酸的量与纯化程度,是PCF成败与否的关键环节之一,传统的DNA纯 化方法通常采用SDS和蛋白酶K来消化处理标本。SDS勺主要功能是:溶解 细胞膜 上的脂类与蛋白质,因而溶解膜蛋白而破坏细胞膜,并解离细胞中的核蛋白,SDS 还能与蛋白质结合而沉淀;蛋白酶K能水解消化蛋白质,特别是与DNA结合的组蛋 白,再用有机溶剂酚与氯仿抽提掉蛋白质和其它细胞组份,用乙醇或异丙醇沉淀核 酸。提取的核酸即可作为模板用于 PCR反应。
一般临床检测标本,可采用快速简便的方法溶解细胞,裂解病原体,消化除去 染色体的蛋白质使靶基因游离,直接用于PCF扩增。RNA模板提取一般采用异硫氤 酸弧或蛋白酶K法,要防止RNase降解RNA。
5、Mg2+浓度
Mg2+对PCRT增的特异性和产量有显著的影响,在一般的 PCF反应中,各
种dNTP浓度为200umol/L时,Mg2+浓度为?L为宜。Mg2+浓度过高,反应特异性 降低,出现非特异扩增,浓度过低会降低Taq DNA聚合酶的活性,使反应产物减 少。
弓I物是PCR特异性反应的关键,不好的引物严重影响实验的质量,好的引物 可以事倍功半;酶的选择一般是看实验的目的,例如克隆长片段,可能就需要高保真 的聚合酶;dNTP浓度和Mg2+浓度高了会影响PCF反应特异性。DNA模板 中还有 蛋白质也会严总影响PCF质量,因此上述5个基本成分质量和浓度必须 合理。
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