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结论: 监测菌血症对临床十分重要 血培养分离的菌株有助于患者的诊断和治疗 正确的抗感染治疗会降低死亡率 * 结论: 怀疑血流感染,应做血培养 至少应采集2套血培养,每套包括需氧及厌氧培养 每次应抽取足量的血液 绝大多数的细菌在5天内可被检出 * Text1 Text2 Text3 Text4 Text5 皮肤消毒 保持手的卫生 准备血培养瓶 抽取血标本 血标本采集的量 * 痰标本采集注意事项 1、除24小时痰标本外,痰液收集时间宜选择在清晨。 2、查痰培养及肿瘤细胞标本应立即送检。 3、避免在进食后两小时内留取咽拭子标本,以防呕吐,棉签不要触及其它部位以免影响检验结果。 * 一概述 痰:是气管、支气管和肺泡分泌物的混合物,当呼吸道粘膜和肺泡受刺激时痰量增加。在病理状态下,不仅痰量增多,其性质也发生变化。 * 二、采集指征 痰液标本是临床微生物学检验最常见的标本。有下列体征之一,应进行痰培养: 1、咳嗽:咳嗽咳痰是下呼吸道感染最常见的症状。 2、咳血:包括泡沫血痰、鲜血和痰中带血等 3、呼吸困难:呼吸急促或哮喘,常伴有胸痛 4、发热伴白细胞增高尤其是中性粒细胞或CRP明显增高 5、胸部影像学检查提示有感染可能。 * 三、一般原则 1、采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前。 2、宜采用清晨第二口痰液。 3、对于普通细菌性肺炎,痰标本送检每天一次,连续2~3天。不建议24h内多次采样送检。 * 四、采集方法 一、自然咳痰法与雾化导痰法 1.用物准备:无菌容器、生理盐水、化验单。 2. 核对患者床号、姓名等。 3.无痰或痰量极少者可用3%~5%氯化钠溶液5ml雾化吸入约5min后留取痰液。雾化液内不能加抗生素。 * 采集方法 4 .如有可能,应在医护人员直视下留取清晨第二口痰。嘱咐患者留取前摘取牙托,清洁口腔,如刷牙后反复用生理盐水漱口;深吸气后用力自气管深部咳出痰液,置无菌容器内。应尽可能防止唾液及鼻咽部分泌物混入样品,不应用纸巾包裹痰液。 护士可协助患者拍击其背部。 * 采集方法 二、经人工气道吸引法 1 .用物准备:负压吸引器、生理盐水、一次性吸痰管、无菌手套、无菌容器、化验单 2.核对患者床号、姓名等。 3.将患者头部转向操作者一侧。 4 .进行手卫生后将一次性吸痰管末端拆开,连接吸引器,调节吸引器至适宜负压(成人:40.0~53.3kPa;小儿:<40.0kPa) * 经人工气道吸引法 5.一次性吸痰管外包装去除,戴手套持吸痰管试吸生理盐水,检查管道是否通畅。 6.折叠一次性吸痰管末端,插入口腔或鼻腔或人工气道至适宜深度,放开吸痰管末端,轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。见吸痰管内有痰液吸出,即折叠一次性吸痰管退出,将一次性吸痰管与吸引器分离(使用人工呼吸机者,一次吸痰时间不超过15s,吸痰前后需吸入高浓度氧气1~2min)。 * 经人工气道吸引法 7 .将痰液注入无菌容器内,如痰液黏稠可用一次性针筒向吸痰管末端注入少量生理盐水,将痰液冲入无菌容器内并贴上检验条码。 运送与保存 应在2h内送至实验室,否则应4℃冷藏,但放置时间不可超过24h * 注意事项 1、标本采集的最佳时机应在使用抗菌药物之前。 2、严格无菌操作 3、及时送检标本,防止标本中的原始菌死亡或繁殖,最好在30分钟内,不得超过2h。延迟送检或待处理标本应置于4摄氏度保存,保存标本应在24h内处理。 4、避免正常菌群的污染。 5、标本量足够。 6、专用培养杯。 * thank you * 温馨提示: 本PPT课件下载后,即可编辑修改, 也可直接使用。 (希望本课件对您有所帮助) * 二、静脉采血要求 1、采血前准备好采血必备物品,根据检查项目选择相应试管,采血量按试管上标示,采血量不足或过多可能无法检测。同时向患者做出适当的解释,以缓解患者的紧张感。 * 推荐采血顺序 若患者需采集多管标本,建议采用以下顺序: 1、血培养管或血培养瓶 2、红头管(不含添加剂) 3、浅蓝头管(凝集管) 4、含添加剂的其它采血管 * 血培养瓶 红头管 前蓝头管 绿头管 紫头管 黑头管 采血注意事项 1、在安静状态下采集血标本 2、若患者正在进行输液治疗,应从非输液侧肢体采集。 3、同时采集多种血标本时,根据采集管要求依次采集血标本。先抽取抗凝管,再抽取干燥管。只能轻柔上下摇匀,不能剧烈左右震荡,防止溶血。 4、采血时尽可能缩短止血带的结扎时间。 5、标本采集后尽快送检,送检过程中避免过度震荡。 * 关于血培养 血液属于天然的无菌体液,血流感染的细菌种类往往比较单一,血培养的结果对于明确诊断意义重大。 * 血培养 定义 将新鲜离体的血液标本接种于营养培养基上,在一定温度、湿度等条件下,使对营养要求较高
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