鱼类生理学实验.pptx

会计学;实验一鱼类生理学实验常用仪器实验基本操作技术;一、鱼类生理学实验的地位 本课程共20学时，属专业基础课程 成绩计算：报告90 %，考勤10 % 二、鱼类生理学实验方法;三、鱼类生理学实验目的 1.掌握基本实验方法； 2.掌握主要仪器的操作方法； 3.掌握生理实验基本技能； 4.独立分析实验结果、写出规范的实验报告。;四、鱼类生理学实验要求 1.实验前：教师和学生均做好实验准备工作。 2.实验中：教师简要讲解实验原理、关键步骤、实验要求等。学生领取器材，归还时复核，损坏登记，丢失赔偿。 3.实验后：归还实验用品，动物尸体按指定位置放置，轮流打扫清洁卫生；转录、整理实验结果，及时上交实验报告。;五、常用生理仪器的使用 （一）刺激系统 1.刺激器 2.刺激电极 （1）普通电极 （2）保护电极 （3）Zn-Cu弓 （二）引导、换能系统 1.压力换能器 2.张力换能器;（三）放大系统（信号调节） 放大器：可将生物电信号放大数千倍 （四）显示、记录系统 1.记纹鼓 2.生理记录仪 常用有二道、四道及八道仪等 3.计算机生物信号采集处理系统;六、鱼类生理实验基本操作技术 （一）手术器械 1.刀：手术刀（指压式、执笔式、反挑式） 2.剪：外科剪、眼科剪 3.镊：外科镊、眼科镊 4.钳：止血钳 5.其他：探针、玻璃分针、蛙板、锌铜弓、蛙心夹等 （二）实验动物选择 健康动物;七、鱼类麻醉剂 麻醉剂能够降低鱼体新陈代谢，减少对鱼体的伤害，提高存活率。 （一）麻醉剂的作用原理 麻醉剂首先抑制脑的皮质（触觉丧失期），再作用于基底神经节与小脑（兴奋期），最后作用于脊髓（麻醉期）。 过大剂量或过长的接触可深及髓质，使呼吸与血管舒缩中枢麻痹，最终导致死亡。;（二）鱼类麻醉过程的行为特征 表1 麻醉程度分期及鱼类的行为表现 注：“±”-正常；“＋”-略失；“－”-丧失。;表2 复苏过程分期及鱼类的行为表现;（间氨基苯甲酸乙酯甲烷磺酸盐） MS-222易处理、效力迅速、安全性高，被美国国家食品及药物管理局（FDA）批准为渔用麻醉剂。 MS-222可采取浸泡、喷雾和注射等方法使用。 MS-222主要在脾脏、肝脏中积聚，过高浓度会引起死亡。 MS-222适宜活鱼运输，将鱼放在清水中仅1 min就能苏醒，但FDA要求经MS-222麻醉的鱼，食用必须经过21 d的休药期才可销售；另外，由于其价格昂贵限制了它的应用。;2.丁香酚（2-甲氧-4丙烯基酚） 全麻剂，是一种植物香料，丁香酚及其代谢物能够快速从血液和组织中排出，不会诱发机体产生有毒和突变物质，在医学上作为牙科镇痛剂被广泛应用。 丁香酚无残留期，是合法的水产麻醉剂，能同时满足安全性、高效性和低成本的要求，已广泛应用于亲鱼采卵、活鱼运输以及手术中，对鲤鱼、真鲷、鳗鱼等有强烈的麻醉作用。 与MS-222相比，丁香酚毒性更小，无残留，但它的入麻时间与复苏时间比MS-222更长。;2 C02 是唯一被允许用来运输食用鱼的化学麻醉剂。 用C02 麻醉鱼，没有药物消退期，食用鱼可直接上市销售，但其麻醉时间和复苏时间相对较长，麻醉水溶液使用的浓度范围很窄，且只对部分鱼有麻醉作用，因而应用范围受到限制。 如用C02 辅助运输鲤成鱼，须分别用高分压（27.33 KPa）和低分压（13.17 KPa）的C02 气流交替刺激鲤成鱼，经15～30 min后鱼即进入昏眠状态，运输时间可维持1 h左右，且死亡率很低。;也可用C02 和 02（50：50）的混合气体辅助运输活鱼。 直接往装有鲫鱼和鲤鱼的水体中注入气体，使鱼在水中的行为逐渐迟钝。约25 min后，鱼便沉到水底“睡眠”，此时可将鱼从水中捞出进行运输，持续时间可超过30 h。 当鱼运到目的地后，再将它们放入水中并注入02，5 min后即可苏醒。;实验二 计算机生物信号采集处理系统 一、系统组成与工作原理 PCLAB-UE由硬件和软件两部分构成，硬件主要完成对各种生物电信号与非电生物信号进行调理、放大，并对信号进行模/数（A/D）转换，使之进入计算机。软件主要对已经数字化了的生物信号进行显示、记录、存储、处理及打印输出，同时对系统各部分进行控制，与操作者进行人机对话。;二、主界面 ? 从上到下依次分为：标题栏、菜单栏、工具栏、状态提示栏及采样窗、控制面板和数据窗等其他多个相应的子窗口组成。 ;三、使用方法 1.设置：标准配置，恢复出厂时的配置 2.新建：实验项目→填写信息→实验窗口→开始实验 3.采样：记录实验数据 4.控制面板参数调节 （1）通道功能调节 （2）刺激参数调节 5.文件存储：F：/ 文件名：09水养3-呼吸（左2） 6.编辑： 打开原文件→选择→复制→打开“工具”下的 “画图”→处理文件→复制图