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Q-PCR 实验流程
一、 ①实验前准备,每天早上到实验室后,先把超净工作台的紫外灯翻
开 15-20 分钟。②超净台前做实验,需佩戴干净的橡胶手套/一次性薄
膜手套,RNA 抽提需带口罩。③取 EP 管/枪头时需用镊子,不可以
用使用过的手套直接取用。取完 EP 管/枪头后,袋子及时封好。④橡
胶手套须放入超净台照射紫外,实验操作过程中不得带出超净台,移
液器在一天工作完毕后调至最大量程,并用 75% 乙醇清洁移液器,枪
头盒及超净台面。⑤实验进展的过程中或观看实验时,没有带口罩不
要在超净台前讲话。
二、 总 RNA 抽提
1〕细胞培养皿中细胞样品用 1*PBS 洗两次后,用 1ml 枪将 PBS 吸干净,
参加 1ml Trizol 〔Invitrogen 〕溶液,吹打混匀,并吸至 1.5ml RNase free EP
管中使细胞充分裂解,室温静置 5min ;
组织样品用液 氮充分研磨 ,参加 1ml Trizol 〔Invitrogen 〕溶液,混匀,
室温放置 5min 使其充分裂解;〔管盖与管壁都需标记样品名称〕
2)参加 200μl 氯仿,剧烈振荡混匀 30s ,使水相和有机相充分接触 ,室温
静置 3-5min ;〔离心时离心管按顺序排放, 离心完毕,离心管的顺序
也按顺序排好,与第一步的顺序一致〕
3 〕 4℃下 ,14,000g 离心 15min ,可见分为三层,RNA 在上层水相 ,移至
另一个新的 RNase free EP 管;〔用 20-200ul 的枪吸取上清,吸上清时,
枪头应沿着 液面上层吸取上清,枪头不可碰 到、吸到中间层〕
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4)沉淀 RNA :参加等体积异丙醇,轻柔地充分混匀〔颠倒6-8 次〕〔不
应用振荡器混匀〕,室温静置 10min ;
5)4℃下,14,000g 离心 10min ,收集 RNA 沉淀〔如离心后仍不见 EP 管
底部有沉淀,应将 EP 管放置在-80 度冰箱过夜,继续在 4℃下,14,000g
离心 10min ,收集 RNA 沉淀〕,去上清;
6)用 75 %乙醇洗涤两次〔12,000g 离心 5min〕〔参加乙醇后只需轻轻颠
倒 EP 管即可,不用振荡器震荡或枪头吸打沉淀〕,超净台风干;沉淀不
能过干或过湿,过干那么不易溶解,过湿那么乙醇残留。
7)视沉淀量参加适量 DEPC 水〔至少 15ul〕溶解沉淀。
三、去基因组
使用 RNase-free 的 DNase І 〔Promega 〕,按以下体系配置反响液,37℃
消化 30min ,65℃灭活 10min。
RNA 30 µl
DNase І 20 µl
10 x buffer 10 µl
H2O(RNase free) 39.5
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