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基因组编辑;基因编辑的定义:
通过精确识别靶细胞DNA片段中靶点的核苷酸序列,利用核酸内切酶对DNA靶点序列进行切割,从而完成对靶细胞DNA目的基因片段的精确编辑。 ;基因编辑的优势;基因编辑原理;
第一代: ZFN(锌指核酸酶)
第二代: TALEN(转录激活样效应因子核酸酶)
第三代: CRISPR/Cas9(成簇的规律性间隔的短回文重复序列)
第四代:NgAgo - gDNA 韩春雨; ZFN 基因组编辑技术;ZFN=DNA识别域+核酸内切酶
DNA识别域:
由一系列 Cys2-His2锌指蛋白(zinc-fingers)串联组成(一般3~4个),每个锌指蛋白识别并结合一个特异的三联体碱基。
核酸内切酶:
非特异性核酸内切酶FokI,形成二聚体时切割双链DNA。;ZFN 由锌指蛋白(ZFP)和 FokⅠ核酸内切酶组成。其中,由 ZFP 构成的 DNA 识别域能识别特异位点并与之结合,而由FokⅠ构成的切割域能执行剪切功能,两者结合可使靶位点的双链DNA 断裂(DSB)。于是, 细胞可以通过同源重组(HR)修复机制和非同源末端连接(NHEJ)修复机制来修复 DNA。HR 修复有可能会对靶标位点进行恢复修饰或者插入修饰,而 NHEJ 修复极易发生插入突变或缺失突变。两者都可造成移码突变,因此达到基因敲除的目的。; ZFN 诱导的基因组编辑技术可应用于很多物种及基 因位点,具有较好的发展潜力。
缺点:
(1)以现有的策略设计高亲和性的 ZFN,需要投入大量的工作和时间;(2)在细胞中持续表达 ZFN 对细胞有毒性;(3)虽然三联体设计具有一定特异性,但仍然存在不同程度的脱靶效应。;TALEN 基因组编辑技术; TALENs 包含两个 TALEN 蛋白, 每个 TALEN 都是由 TALE array 与 FokⅠ融合而成. 其中一个 TALEN 靶向正义链上靶标位点, 另一个则靶向反义链上的靶标位点. 然后 FokⅠ形成二聚体, 在靶向序列中间的 spacer 处切割 DNA, 造成双链 DNA 断裂, 随后细胞启动 DNA 损伤修复机制. 针对不同的TALEN 骨架, 其最适宜的spacer长度不同, 其长度范围一般为12~20 bp. ; 实验结果表明, TALENs在靶向DNA时, 第一个碱基为 T 时其结合效果更佳。
通过组合各类模块,可对任意核苷酸序列进行靶向特异性敲除或内源基因的表达调控。
目前已在人、大鼠、小鼠、猪、羊、斑马鱼、拟南芥及酵母等多类物??中得到成功应用。;CRISPR /Cas9 基因组编辑技术
CRISPR/Cas9系统的发现可以追溯到1987年,日本学者首次在大肠杆菌(E. coli)基因组中发现一连串短的空间间隔重复序列。随后,在其他细菌和古细菌中也发现了这一特殊的序列。
2002年科学家才将其命名为成簇的规律间隔短回文重复序列(Clustered regularly interspaced short palindromic repeats, CRISPR) ,现有测序结果显示40%的细菌基因组中含有CRISPR位点。
2005年,科学家们发现CRISPR中的许多间隔序列来源于质粒和病毒,CRISPR的基因座能够被转录,并且Cas基因编码的蛋白具有核酸酶和解旋酶结构域,因此推测CRISPR/ Cas 是利用无义的RNAs标记外源核酸序列的防御系统。; 2011年,才揭示了CRISPR/Cas系统的分子机制:当病毒首次入侵时,细菌会将外源基因的一段序列整合到自身的CRISPR的间隔区;病毒二次入侵时,CRISPR转录生成crRNA前体(pre-crRNA),pre-crRNA经过加工形成含有与外源基因匹配序列的 crRNA,该crRNA与病毒基因组的同源序列识别后,介导Cas蛋白结合并切割,从而保护自身免受入侵。
2013年,研究者报道了CRISPR/Cas9系统可高效地编辑基因组。其中分别在人类细胞和小鼠细胞中成功对部分基因实现了编辑。 ; CRISPR/Cas系统概述
CRISPR/ Cas系统广泛存在于细菌和古菌中,是它们的一种适应性免疫系统,能够识别自身和外源入侵DNA片段。CRISPR/ Cas系统有3种类型:Ⅰ型、Ⅱ型和Ⅲ型。
Ⅰ型和Ⅲ型CRISPR/Cas系统较为复杂,需要多个Cas蛋白形成复合体切割DNA双链,而Ⅱ型CRISPR/Cas系统只需要一个Cas9蛋白核酸酶来切割DNA双链,即为现在广泛应用于遗传学基因编辑的CRISPR/Cas9系统。
TypeⅡ系统中只有一种核酸酶—Ca
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