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电泳分析法金叶; 1807-1809年,俄国物理学家F.F.Reuss首次发现黏土颗粒的电迁移现象,并开始研究带电粒子在电场中的电迁移行为,测定它们的迁移速度。; 1937年,蒂塞利乌斯( Tiselius,瑞典)将蛋白质混合液放在两段缓冲溶液之间,两端施以电压进行自由溶液电泳,第一次将人血清提取的蛋白质混合液分离出白蛋白和α、β、γ球蛋白;发现样品的迁移速度和方向由其电荷和淌度决定。
第一次的自由溶液电泳;第一台电泳仪;
1948年,获诺贝尔化学奖。;;一、定义及原理;以生物大分子为例阐明电荷来源;二、电泳分类 ; 1、自由界面电泳
2、区带电泳
3、高效毛细管电泳;自由界面电泳 :在没有惰性支持物的液体接界面上进行的电泳。;区带电泳: 是在溶液中加入一些惰性物质或凝胶物质作为支持物,泳动物质在支持物间隙中移动的电泳方法。 避免对流的干扰。;DNA序列分析电泳槽;中型双垂直电泳槽;实验室常见的电泳装置;1、区带电泳基本理论;当电泳达到稳态时,电动力等于介质的阻力,即F=F’。因此,我们得到
v/E表示迁移率,也称淌度,以U表示
带电粒子的电泳淌度在一定条件下取决于粒子本身的性质,即与其所带电量成正比;与其半径及介质粘度成反比。;电泳淌度;影响电泳迁移率的因素(必考):
1、影响电泳迁移率的外界因素:
电场强度
溶液的pH值
溶液的离子强度
电渗现象
溶液的温度和黏度
分子筛效应
2.影响电泳迁移率的内在因素:
质点所带净电荷的量
质点的大小和形状;指用滤纸作为支持载体的电泳方法。是最早使用的区带电泳。 ;醋酸纤维薄膜电泳以醋酸纤维薄膜为支持介质。醋酸纤维素是纤维素的醋酸酯,由纤维素的羟基经乙酰化而成。它溶于丙酮等有机溶剂,可涂布成均一细密的微孔薄膜,即醋酸纤维素膜(cellulose acetate membrane,简称CAM)。
;优点:
精确性高。
快速省时。一般电泳45-60min即可。
灵敏度高,样品用量少。
应用面广。如胎儿甲种球蛋白,溶菌酶,胰岛素,组蛋白等用醋
酸纤维薄膜电泳能较好地分离。
有利??扫描定量及长期保存。
缺点:
分离效果不太好。;醋酸纤维素薄膜电泳示意图;(1)预处理
膜的准备:根据分离样品的多少将醋酸纤维薄膜裁切成合适的大小,在膜片无光泽的一面上用铅笔轻轻划一条加样线。加样线可选在距膜片一端2~3cm处,有时也可选在膜片的中央线附近。
膜片浸透:在一浅碟或培养皿中倒入所选择的缓冲液,将膜片小心地浮铺在缓冲液面上,将膜片的的无光泽面朝下。膜片的底面吸收电极缓冲液后逐渐下沉,直至电极缓冲液将膜片完全浸透。
膜片在电极缓冲液完全浸透后,用钝头镊子取出,稍稍用滤纸吸去多余的缓冲液,然后将膜片夹在两层滤纸之间吸干多余的缓冲液,但不能吸得过干而出现不透明的白色部分。;
用铅笔在薄膜无光泽面一端2cm处画一细线,加样时平稳地前后或左右来回移动加样器,于细线处加样。
毛细管、微量吸管、微量注射器或印模都可以用来加样。
线型加样
醋酸纤维膜上的样品线条宽度不应超过4 mm,样品线与膜片上边边缘之间的距离一般为3~5 mm。
样品的加样量或加样体积随样品的浓度、染色和检测方法等条件的不同而有较大的变化。; (3)电泳
电泳前,先用钝头镊子将加过样的膜片安放在电泳槽的支架上,膜片两端约0.5~1.0 cm的部分应与支架的顶面紧贴,膜面尽可能不与手指直接接触,以免膜面受到污染。如果在同一电泳槽内同时安放几张膜片,应避免相邻膜片之间彼此接触。
在电泳槽的两个电极室内注入适量的电极缓冲液,用3 ~ 4层滤纸作盐桥。膜片的两端分别用滤纸盐桥盖住,以此将膜片拉平固定并使电流通过。盖上电泳槽盖,让膜片在电泳槽内水平静置平衡10分钟,然后将电泳槽的两个电极与直流电源的正负极分别相接。;染色剂要求:不应溶解醋酸纤维薄膜
一般蛋白质的染色方法
氨基黑10B染色:酸性染料,其磺酸基与蛋白质反应构成复合盐,是最常用的蛋白质染料。
丽春红S方法:是一种水溶性的阴离子重氮染料,带负电荷的丽春红分子与正电荷的蛋白质氨基基团结合,也可以非共价键形式与蛋白质非极性区域结合,显示红色蛋白条带。用3%三氯醋酸配制0.2%丽春红S溶液,将干燥的膜片浸入此染色剂中。染色时间不需要严格控制,但一般染色10分钟比较合适。;(5)漂洗/脱色
将薄膜取出后,移至漂洗液中,漂洗若干次,至无蛋白区无色。
(6)干燥和透明
干燥:避免膜片发生卷
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