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NDM基因的检测与确认第1页/共15页
NDM-1的基因检测PCR检测序列测定——最终确认检测对象:已经过表型筛检的菌株进行NDM-1基因确认对大批菌株直接进行筛检对标本的检测高通量、快速、准确第2页/共15页
PCR检测方法——模板制备模板制备:菌株、标本菌株(1)G-细菌: a. 水煮模板:新鲜培养物悬浊于100-200μl纯水 沸水浴10min以上 8000rpm以上离心5min 吸取上清,-20 ℃保存 b. 试剂盒提取基因组DNA(说明书)第3页/共15页
PCR检测方法——模板制备菌株(2)G+细菌: a. 试剂盒提取基因组DNA(说明书) 溶菌酶充分作用 b. 水煮模板:新鲜培养物悬浊于100-200 μ l纯水 低温反复冻融(-40 ℃以下或液氮) 沸水浴10min以上 8000rpm以上离心5min 吸取上清,-20 ℃保存2. 标本:根据标本类型不同选择相应的试剂盒第4页/共15页
PCR检测——引物选择引物选择:扩增片段位于CDS正向的191-482位置(反向345-636位置) 483-769位置(反向58-344位置)引物特异性较好,理论上无非特异扩增片段引物引物序列(5 '→3')产物大小(bp)退火温度(℃)引物117U-191CAGCACACTTCCTATCTC2925517L-465CCGCAACCATCCCCTCTT引物2F-58GGCGGAATGGCTCATCACGA28660R-344CGCAACACAGCCTGACTTTC第5页/共15页
PCR检测——PCR体系引物合成稀释冻干粉末,开启前10000rpm离心5min小心开盖,防止粉末喷出1.0OD+268 μ l纯水,充分震荡混匀 ,浓度20 μ M(20 μ mol/L)20 μ l体系(右图)若使用含有Mg2+的10×buffer的加入量同上表,MgCl2体积用水补齐 PCR Premix预混液(根据说明书)成分体积(μl)10×buffer2dNTP (10mM each)1.6MgCl2 (2.5mM)1.2Primer-F(20μM)1Primei-R(20μM)1Taq(5U/μl)0.2纯水12DNA1ng总体积20第6页/共15页
PCR检测——PCR体系没有阳性对照,如何确保体系正常运转同批 配置体系时:增加1管不使用NDM-1引物 加入常用引物及模板,扩增其他已知片段人工合成长片段DNA作为阳性对照?? 不建议合成:首次发现时如何排除“污染”质疑 如果一定要合成:在中间区域加入若干数量的突变位点 作为区别合成片段与实际阳性片段的标志第7页/共15页
PCR检测——PCR反应条件与电泳反应条件:(约耗时1小时25分钟)94℃ 5min94℃ 15secTm℃ 30sec 25个循环72℃ 30sec72℃ 5min电泳:1.5%琼脂糖电泳 marker:DL2000第8页/共15页
基因序列测定——最终确认PCR阳性结果:携带NDM-1基因 非特异扩增最终确认:序列测定测序公司,当天得到结果测序样品:100 μ l以上PCR产物引物及其浓度:上下游引物各10 μ l(20uM)测序要求:双向、测通,提供拼接好的序列 第9页/共15页
基因序列测定——测序结果判读测序彩图:峰体清晰、无套峰第10页/共15页
基因序列测定——测序结果判读双向测序结果拼接起始段结果(10-30bp)、反应结果段结果(500bp)不可用第11页/共15页
基因序列测定——序列比对下载参考序列: Genbank:FN396876.1 /nuccore/255031061 AB571289、HQ171206、HM853678将测度序列与参考序列比对:
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