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(一) 常用的微生物分离纯化方法
菌种分离纯化的方法有:稀释混合倒平板法、稀释涂布平板法、
平板划线分离法、稀释摇管法、液体培养基分离法、单细胞分离法、
选择培养分离法等。其中前三种方法最为常用,不需要特殊的仪器设
备, 分离纯化效果好, 现分别简述如下
1. 稀释混合倒平板法
平板是指经熔化的固体培养基倒入无菌培养皿中, 冷却凝固而
成的盛有固体培养基的平皿。该法是先将待分离的含菌样品, 用无菌
生理盐水作一系列的稀释(常用十倍稀释法, 稀释倍数要适当), 然后
分别取不同稀释液少许 (0.5-1.0ml)于无菌培养皿中, 倾入已熔化并
冷却至50℃左右的琼脂培养基, 迅速旋摇, 充分混匀。待琼脂凝固后,
即成为可能含菌的琼脂平板。
于恒温箱中倒置培养一定时间后, 在琼脂平板外表或培养基中
即可出现分散的单个菌落。每个菌落可能是由一个细胞繁殖形成的。
挑取单一个菌落, 一般再重复该法1-2次, 结合显微镜检测个体形态
特征,便可得到真正的纯培养物。若样品稀释时能充分混匀,取样量和
稀释倍数准确,则该法还可用于活菌数测定。
图4 混合倒平板操作法示意图 图5 涂布平板操
作法示意图
2. 稀释涂布平板法
采用上述稀释混合倒平板法有两个缺点,一是会使一些严格好氧
菌因被固定在琼脂中间,缺乏溶氧而生长受影响,形成的菌落微小难于
挑取;一是在倾入熔化琼脂培养基时,若温度控制过高,易烫死某些
热敏感菌,过低则会引起琼脂太快凝固, 不能充分混匀。
在微生物学研究中, 更常用的纯种分离方法是稀释涂布平板
法。该法是将已熔化并冷却至约50℃(减少冷凝水) 的琼脂培养基, 先
倒入无菌培养皿中, 制成无菌平板。待充分冷却凝固后,将一定量(约
0.1 ml) 的某一稀释度的样品悬液滴加在平板外表, 再用三角形无菌玻
璃涂棒涂布,使菌液均匀分散在整个平板外表, 倒置温箱培养后挑取
单个菌落。
另一种简单快速有效的涂布平板法, 可省去含菌样品悬液的稀
释, 直接吸取经振荡分散的样品悬浮液l滴参加1号琼脂平板上, 用
一支三角形无菌玻璃涂棒均匀涂布, 用此涂棒再连续涂布2号、3号、
4号平板(连续涂布起逐渐稀释作用,涂布平板数视样品浓度而定), 翻
转此涂棒再涂布5号、6号平板, 经适温倒置培养后挑取单个菌落。
该法可称之为玻璃涂棒连续涂布分离法。
3. 平板划线分离法
先倒制无菌琼脂培养基平板,待充分冷却凝固后,用接种环以无菌
沾取少量待分离的含菌样品,在无菌琼脂平板外表进行有规则的划
线。划线的方式有连续划线、平行划线、扇形划线或其它形式的划线。
通过这样在平板上进行划线稀释, 微生物细胞数量将随着划线次数
的增加而减少, 并逐步分散开来。经培养后,可在平板外表形成分散的
单个菌落。但单个菌落并不一定是由单个细胞形成的,需再重复划线
1-2次, 并结合显微镜检测个体形态特征, 才可获得真正的纯培养物。
该法的特点是简便快速。
图6 平板划线分离操作法示意图
个体细胞的生长难以测定, 而且生长与繁殖是交替进行的, 因
此,微生物的生长繁殖一般不是依据个体细胞的大小, 而是以群体细
胞数目的增加作为指标的。测定微生物细胞数量的方法很多, 主要有
显微镜直接计数法、平板菌落计数法、光电比浊法、最大可能数(MPN)
法、膜过滤法等。
测定酵母细胞数或霉菌孢子数常采用在显微镜下直接进行计数
的方法, 该计数方法被广泛应用于酒精、啤酒和白酒等的工业化生产
中。
平板菌落计数法
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