临床微生物检验标本的采集与合理使用抗生素.ppt

8.今天的培养结果怎么与前天的不一样？ 取材是否规范。 痰标本，有时选优势菌做，就可能导致两次不一样。 9.明显稀便，培养结果为何正常？ 大便普通培养，通常只能鉴定志贺菌、沙门菌感染。 怀疑霍乱时，需开霍乱弧菌培养。 可能病毒感染(轮状病毒、肠道病毒)。 四、临床微生物标本的采集及运送 （一）规范采集及运送标本的重要性 我们应该追求： “准确的病原学诊断” “针对性病原学治疗” “有效预防医院感染”   正确的微生物标本采集和运送，是准确的病原学诊断的前提！ 微生物让人类步步为营， 检验误差发生率哪个阶段最高 研究表明，60%以上实验误差发生在分析前，这也是检验质量管理中最难控制的部分。 因此，获得准确结果的重要环节 分析前质量控制 不合格标本带来的后果 标本不合格 结果不准确 诊断错误 治疗错误 （二）微生物标本采集原则 及时采集微生物标本作病原学检查 在抗菌药物使用前采集标本 采样时严格执行无菌操作 采样后立即送检甚至床旁接种尤其是厌氧培养 棉拭子标本要保持湿润，宜用运送培养基 标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂。 送检标本应注明来源和检验目的 最有价值的细菌学检测项目 血液培养 脑脊液培养 胆汁培养 胸腹水培养 关节液 其他无菌体液或分泌液 标本的采集和选择的基本要求 1.选择准确的解剖部位、合适的时间、适当的设备采集标本； 2.采集足够量的标本，以保证检测的阳性率； 标本运送的基本要求 1.所有常规性细菌学检验的标本需在采集后2h内送至微生物室，若延迟送检，应放于安全防护盒内；脑脊液应在15分钟内送到； 2.尿液标本置于2-4℃冰箱保存不能超过24h； 3.疑似苛养菌感染的标本立即保温送检。 （三）各类临床微生物标本的采集 1.血培养标本的采集 “只有在发热时，才需要进行血培养。” ————关于血培养指征 想采就采 血培养的指征 临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者有： 不明原因的发热(≥ 38℃)或体温过低(≤ 36℃) 白细胞增多（ ＞ 10×109/L，特别有“核左移”未成熟的或杆状核白细胞增多） 粒细胞减少（ ＜成熟的多核白细胞1×109/L ） 休克，寒颤，多器官衰竭 严重的局部感染(脑膜炎，心内膜炎，肺炎，肾盂肾炎，腹部术后感染，…) ， CRP升高 采集血培养样本的最佳时间 尽可能在患者寒战或开始发热时采血 在患者接受抗生素治疗前采血 如患者已经应用抗菌药物进行治疗，应在下一次用药之前采血培养 药物剂型及生物利用度（纯品、商品） 标本运送的基本要求 涂片镜检结果与培养结果不吻合？ 抗生素停药后，感染症状再次出现。 在正常人体中，上述体液均是无菌的。 幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方，以诱发咳痰。 然后插入肛门约4～5cm（幼儿约2～3cm）处，轻轻在直肠内旋转，擦取直肠表面粘液后取出，盛入无菌试管或保存液中送检。 下呼吸道（痰培养）标本采集 选择准确的解剖部位、合适的时间、适当的设备采集标本； 采血量是影响检出阳性率最关键因素 临床常让患者留取清洁中段尿，应该在医护人员监督指导下让患者正确的留取清洁中段尿； 因此，获得准确结果的重要环节 有尿路感染症状者，前次培养结果阴性或抗菌治疗48h后仍持续发热。 切不可置冰箱保存,否则会影响检出率。 开放脓肿处理同开放伤口。 试验的药物代表一类药，而不是一种药。 CO2孵箱 普通孵箱 干燥箱 合格标本的判断标准 但有可能下尿道细菌进入膀胱，导致继发感染，一般不提倡使用。 可能病毒感染(轮状病毒、肠道病毒)。 血培养检测消毒程序 1.皮肤消毒程序：严格执行三步法（防止皮肤寄生菌污染）（1）用75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上；（2）然后用1%-2%碘酊作用30秒或10%碘伏作用60秒，从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上； （3）最后用75%酒精脱碘，待酒精挥发干燥后采血。 新生儿及对碘过敏的患者，只能用75%酒精消毒60s，待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。 2.培养瓶消毒程序：（1）用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞，作用60秒。（2）用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞表面剩余的酒精，然后注入血液。  关于采集血液量 采血量是影响检出阳性率最关键因素 成人一份标本2个培养瓶（需氧＋厌氧），每瓶8－10ml，共20ml；要求至少采两份标本，即40ml。 儿童一般只需采集需氧瓶，在保证采集血量＜1％总血量下，一般为1－3ml。 采血量不足时应优先保证需氧瓶，因临床90％以