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第十一章 血清学试验第五节 中和试验
根据抗体能否中和病毒的感染性而建立的免疫学试验,称中和试验(Neutralizationtest)。中和试验极为特异和敏感,既能定性又能定量,主要用于病毒感染的血清学诊断、病毒分离株的鉴定、病毒抗原性的分析、疫苗免疫原性的评价、血清抗体效价的检测等。中和试验可在体内进行也可在体外进行。
体内中和试验也称保护试验,试验时先对实验动物接种疫苗或抗血清,间隔一定时间后,再用一定量病毒攻击,最后根据动物是否得到保护来判定结果。常用于疫苗免疫原性的评价和抗血清的质量评价。
体外中和试验是将抗血清与病毒混合,在适当条件下作用一定时间后,接种于敏感细胞、鸡胚或动物,以检测混合液中病毒的感染力。根据保护效果的差异,判断该病毒是否已被中和,并可计算中和指数,即中和抗体的效价。根据测定方法不同,中和试验有终点法中和试验和空斑减数法中和试验等方法。
毒素和抗毒素也可进行中和试验。其方法与病毒的中和试验基本相同。
一、终点法中和试验
终点法中和试验(Endpointneutralizationtest)是滴定使病毒感染力减少至50%时,血清的中和效价或中和指数。有固定病毒稀释血清和固定血清稀释病毒两种方法。
(一)固定病毒稀释血清法将已知的病毒量固定,血清作倍比稀释,常用于测定抗血清的中和效价。
病毒毒价单位病毒毒价(毒力)的单位过去多用最小致死量(MLD),但由于剂量的递增与死亡率递增的关系不是一条直线,而是呈S形曲线,在越接近100%死亡时,对剂量的递增越不敏感。而死亡率愈接近50%时,剂量与死亡率呈
直线关系,所以现基本上采用半数致死量(LD
)作为毒价单位,而且LD
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的计算应
50
用了统计学方法,减少了个体差异的影响,因此比较准确。以感染发病作为指标
的,可用半数感染量(ID
)。用鸡胚测定时,可用鸡胚半数致死量(ELD
50
)或鸡胚
50
半数感染量(EID);用细胞培养测定时,可用组织细胞半数感染量(TCID
)。在
50
测定疫苗的免疫性能时,则用半数免疫量(IMD
50
)或半数保护量(PD)。
50 50
病毒毒价测定将病毒原液作10倍递进稀释即10-1、10-2、10-3……,选择4~
6个稀释倍数接种一定体重的试验动物(或鸡胚、细胞),每组3~6只(个、孔)。接种后,观察一定时间内的死亡(或出现细胞病变)数和生存数。根据累计死亡数和生存数计算致死百分率。然后按Reed-Muench法、内插法或Karber法计算半数剂量。
以TCID测定为例说明如下:
50
按Karber法计算,其公式为lgTCID=L+d(S-0.5),L为病毒最低稀释度的对
50
数;d为组距,即稀释系数,10倍递进稀释时d为-1;S为死亡比值之和(计算固
定病毒稀释血清法中和试验效价时,S应为保护比值之和),即各组死亡(感染)数/试验数相加。
若以测定某种病毒的TCID
为例,病毒作10-4~10-7稀释,记录其出现细胞病
50
变(CPE)的情况(表11-1)。则L=-4,d=-1,S=6/6+5/6+2/6+0/6=2.16
lgTCID
=(-4)+(-1)×(2.16-0.5)=-5.66。TCID
=10-5.66,0.1ml。
50 50
TCID
50
为毒价的单位,表示该病毒经稀释至10-5.66(1/105.66)时,每孔细胞接
种0.1ml,可使50%的细胞孔出现CPE。而病毒的毒价通常以每ml或每mg含多少
TCID或(LD
等)表示。如上述病毒的毒价为105.66TCID/0.1ml,即106.66TCID
/ml。
50 50
50 50
表11-1 病毒毒价滴定(接种剂量0.1ml)
病毒稀释
阳性数
CPE
阴性数
%
10-4
6
0
100
10-5
5
1
83
10-6
2
4
33
10-7
0
6
0
正式试验 将病毒原液稀释成每一单位剂量含200LD
(或EID、TCID),
50 50 50
与等量递进稀释的待检血清混合,置37℃感作1h。每一稀释度接种3~6只(个、
管)试验动物(或鸡胚、细胞),记录每组动物的存活数和死亡数,同样按
Reed-Muench法或Karber法计算其半数保护量(PD),即该血清的中和价。
50
(二)固定血清稀释病毒法 将病毒原液作10倍递进稀释,分装两列无菌试
管,第一列加等量正常血清(对照组),第二列加等量待检血清(中和组);混合后置37℃感作1h,每一稀释度接种3~6只试验动物(或鸡胚、组织细胞),记录每
组动物死亡数、累积死亡数和累积存活数(表11-2),按Karber法计算LD,
50
然后
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