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摘要
摘要
磺胺甲恶唑(SMX)是一种人工合成的广谱类抗生素,具有抑菌消炎的作用,广泛应
用于临床和兽医领域。然而,SMX的过量使用破坏了生态平衡和环境中的微生物群落结构,
也严重危及人类和动物的健康。因此,高效降解环境中的SMX是保证生态安全的迫切需求。
生物法去除SMX是目前应用最广、效率最高和最经济实用的方法,其依赖自然选育的SMX
降解菌(群)实现对SMX的高效降解。然而,自然选育的菌株存在降解效率低和环境适应
能力差等问题。为了进一步提高SMX的生物降解效果,使用代谢工程提高环境微生物降解
SMX的效率是一种具有巨大潜力的新策略。然而,由于缺乏环境微生物中的代谢工程改造
工具和方法,阻碍了代谢工程改造。为了解决这一问题,本研究以一株具有优异脱氮功效的
环境微生物——脱氮副球菌(DYTN-1)为底盘细胞,挖掘并表征了梯度强度启动子,用于
调控SMX降解基因簇(sadA、sadB和sadC)的表达水平,同时优化了黄素单核苷酸(FMN)
还原酶的来源,最终显著提高了P.denitrificansDYTN-1对SMX的降解能力。这是目前国内
外首次利用合成生物技术实现强化降解SMX的研究,构建的SMX降解菌株具有同时去除
SMX和氮污染物的双重功能,为多重污染的环境修复提供了技术参考。具体研究内容如下:
(1)挖掘与表征P.denitrificansDYTN-1的内源性梯度强度启动子。对P.denitrificans
DYTN-1的内源启动子进行评估和表征有助于SMX降解基因的优化表达,从而提高降解效
果。首先从P.denitrificansDYTN-1基因组上分别克隆了启动子PglnA、Pnir、PrhO和Pcs。扩增
的四种启动子对sfGFP表现出了梯度表达强度,其GFP/OD600表达水平比为10:12:14:17。
利用4种内源启动子分别调控sadA、sadB和sadC基因的表达水平,mRNA的表达差异达到
2.1-25.3倍,为后续进一步优化SMX降解途径提供了工具。
(2)SMX降解途径基因的表达水平优化强化SMX降解。异源基因的过表达对宿主菌
的生长代谢都会产生负担,因此系统地优化SMX降解基因的表达水平是提高降解效率和细
胞生长的关键。首先,利用筛选的梯度强度启动子PglnA、Pnir和Pcs对sadA的表达水平进行
优化,三种启动子调控下的sadA菌株均对100mg·L-1SMX的降解效率提高到了18.0%左右,
证明SadA具有降解SMX的作用。由于下游基因sadB未表达引起的代谢限制,中间代谢产
物的积累影响了sadA的表达。使用上述梯度强度启动子通过假操纵子结构优化sadA-sadB的
表达,发现sadB基因的共表达促进了SMX的降解。较低强度启动子PglnA调控时,sadA和
sadB表达的组合优化效果最好,继续提高基因的转录水平反而会降低SMX的降解效率。最
终,菌株PglnA-sadA-PglnA-sadB的SMX降解效率最高,达到27.7%。
(3)FMN还原酶来源和表达水平优化强化SMX降解。FMNH2的供应不足可能是限制
SadA和SadB对SMX降解的主要因素。因此筛选高活性FMN还原酶,并利用梯度强度启动
子优化表达水平,有助于进一步提高降解效果。因此,过表达了SadC及其它五种不同来源
的FMN还原酶,进一步提高了SMX的降解效果。除sadC菌株外,其它五种过表达FMN还
原酶的菌株中,菌株的降解效率和单位生物量的降解能力随着FMN还原酶的表达水平增加
而增加。通过比对分析酶活和降解效率发现,CogA、SadC、PsuK和SutR过表达的菌株中降
解效率随着酶活性的增加而提高。SsuE和RutF具有最高酶活,但是其过表达菌株由于表达
摘要
水平过高,导致SMX的降解效率反而降低。因此,实现代谢调控最优化不仅依靠高酶活,
调控元件的适配性也是调控策略的关键因素。最终,构建的最优菌株P.d-pIAB-P
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