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摘要
摘要
慢性胰腺炎(chronicpancreatitis,CP)是由遗传和环境等多因素引起的永久、反复
且不可逆的胰腺纤维化-炎症性疾病,其特征是胰腺组织纤维化,导致细胞外基质堆积,
进而使得内分泌和外分泌功能受损。CP常见病症有腹痛、胰腺纤维化、肠道菌群紊乱,
以及糖尿病、代谢性骨病和胰腺癌等并发症。
大量的研究表明,CP患者肠道菌群与健康人群存在差异,致病菌特别是大肠杆菌
(Escherichiacoli,E.coli)异常富集。E.coli发挥毒力作用主要依赖于高温G蛋白(high
temperatureproteinG,HtpG),其同源物热休克蛋白90在CP纤维化发展过程中发挥重
要作用,且上调蛋白质精氨酸甲基转移酶5(proteinargininemethyltransferase5,PRMT5)
表达的调控。PRMT5作为表观遗传学和信号转导相关的翻译后修饰蛋白酶,在肿瘤和
炎症中通过组蛋白修饰关键转录因子发挥重要作用,参与细胞表型转化。近期研究表明
巨噬细胞的极化可影响胰腺纤维化-炎症微环境,进而激活胰腺星状细胞(pancreatic
stellatecells,PSCs),参与CP的发展。而PRMT5可通过结合巨噬细胞极化的转录因子
Krüppel样因子4(krüppel-likefactor4,KLF4),并甲基化修饰KLF4促进其蛋白积累。
基于以上研究背景,本文推测CP发展过程中E.coli释放HtpG上调PRMT5的表达,甲
基化KLF4参与调控巨噬细胞的极化。结合动物实验和细胞实验,从菌群的角度,阐明
E.coli来源的HtpG上调PRMT5对CP的作用及机制。主要结果如下:
(1)为了明确CP发展过程中E.coli对胰腺PRMT5表达的影响,通过腹腔注射雨
蛙素构建小鼠CP模型。采用16S扩增子测序方法对C57BL/6J小鼠CP模型中肠道菌群
组成进行分析,结果发现E.coli的丰度变化显著,检测到HtpG的表达升高、CD91受体
增加和NF-κB通路的激活。此外,还发现胰腺组织中PRMT5表达的上调。通过免疫荧
光实验,确认CP患者和小鼠CP模型中PRMT5主要表达于巨噬细胞。通过对小鼠分离
出的骨髓源巨噬细胞(bonemarrowderivedmacrophages,BMDM)进行HtpG(E.coli来
源)以及热休克蛋白90的抑制剂17AAG干预,进一步论证HtpG对PRMT5表达的调
控作用。结果表明E.coli释放的HtpG通过CD91受体激活NF-κB通路上调PRMT5的
表达。
(2)为了探究胰腺PRMT5对CP的作用,采用巨噬细胞特异性敲除PRMT5小鼠
和外源使用PRMT5特异性抑制剂EPZ015666的方式,对CP小鼠进行PRMT5干预,
检测CP表型、巨噬细胞极化以及纤维化程度。结果表明,PRMT5的缺失可以缓解CP
发展过程中对胰腺的损伤和纤维化程度,降低α-平滑肌肌动蛋白和Ⅰ型胶原蛋白α1的表
达,并抑制M2巨噬细胞表型转化。
I
摘要
(3)为了阐明PRMT5加剧CP的作用机制,首先检测胰腺组织中KLF4的表达变
化,结果表明CP小鼠胰腺中KLF4表达显著降低,且敲除PRMT5后抑制KLF4表达。
体外实验通过敲除或过表达PRMT5,结合突变质粒转染,并用白细胞介素4刺激BMDM。
结合分子模拟、质谱分析和体内实验,结果表明,PRMT5与KLF4之间存在相互结合关
系。进一步证实,PRMT5介导KLF4的甲基化,抑制其泛素化降解,从而稳定KLF4的
表达。采用BMDM和PSCs体外共培养实验,结合小干扰、过表达质粒和突变质粒,探
究巨噬细胞极化对PSCs的激活作用,结果表明,PRMT5介导KLF4调控巨噬细胞极化
成M2型,释放转化生长因子β激活PSCs。最后,通过构建KLF4腺相关病毒,对巨噬
细胞PRMT5缺失的CP小鼠实现KLF4体内过表达,验
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