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Southern杂交
用适当的内切酶完全酶解约20μg植物总DNA。65oC处理10分钟终止酶切反应。
酶解产物在1×TAE琼脂糖凝胶中,30V电压电泳5小时。(Marker:40ngperlane)
电泳后切去胶周围无用部分,0.25mol/LHCl处理10分钟脱嘌呤。
用2×SSC进行中和。
按Sambrook等(1989)的方法,用0.4mol/LNaOH进行转膜24小时。
2×SSC中和10分钟。
在杂交管中加入适量预热的预杂交液,小心将膜放入,排除气泡。
65oC预杂交3-5小时;
倒出预杂交液,加入5-10ml预杂交液及标记好的探针,65oC杂交16~24小时。
依次用洗膜液I、II、III、IV进行洗膜,每次约10-15分钟(根据信号强弱作适当调节)。
将膜放在滤纸上晾干,用保鲜膜包好;
暗室中压片,-20oC下曝光2-7天(曝光时间依信号强弱而调节)。
冲洗X光片(显影2~5min,定影20min),观察杂交信号的情况。
每次杂交后可用下述溶液依次处理,去除旧探针,硝酸纤维素膜即可反复使用。
A:0.1mol/LNaOH,20min;
B:0.1mol/LTris.HCl(pH7.5),0.1×SSC,0.1%SDS,10min;
C:0.1×SSC,0.1%SDS,10min。
Note:去除膜上探针:
※适用于DNA和RNA杂交:0.5%SDS煮沸,放入膜逐渐凉至室温
※仅适用于DNA杂交:膜在0.4mol/LNaOH中45oC30min,然后0.1×SSC,0.1%SDS,0.2mol/LTris.HCl(pH7.5),15min。
DNA点杂交
将样品DNA点在尼龙膜凹面上,每点DNA约5μg左右;
晾干后,将膜漂浮在NaOH变性溶液中,有DNA的那面朝上,变性10min;
在2×SSC溶液中中和5min。(以下同Southern杂交7-13步)
探针的制备
煮沸变性DNA片段10分钟;
快速取出,冰浴10分钟;
依次加入下列试剂:
1kbMarkerDNA(2ng/μL) 2μl
或双酶切marker(8ng/ul) 1ul
模板DNA(25ng/μL) 2μl
引物(Hexanucleotidemixture) 1μl(0.75ug)
dNTP(10mmol/L)(不含dCTP) 1μl×3
α-32PdCTP 2μl
Klenow 1μl
Klenowbuffer 2ul
H2O xμl
总体积 20μl
37oC水浴1-2小时;
等体积0.4NNaOH中变性5-6分钟。
试剂配制
20xSSC:800ml水中溶解175.3gNaCl(3M)和88.2g(0.3M)柠檬酸钠,加水定容为1L,加入数滴10MNaOH调pH值至7.0。(263gNaCl和132.3g柠檬酸钠为1.5L)
预杂交液: 100ml
5xSSC 25ml20xSSC
0.1%月桂酸钠(N-Lauroylsarcosine)0.1g
0.02%SDS0.2ml10%SDS
1%封闭剂(Blockingreagent)1g
74mlddH2O
变性(转膜)液: 1mol/LNaCl 58.4g
0.4mol/LNaOH 16g/L
中和液: 1.5mol/LNaCl 44g
0.5mol/LTris.ClpH7.2 30.275g约20ml浓HCl
0.001MEDTA0.5MEDTA1mlper500ml
0.25NHCl:4.20ml浓HClper200ml
洗膜液:I:2xSSC+0.1%SDS; 20ml20xSSC,1ml20%SDSper200ml
II:1xSSC+0.1%SDS;
III:0.5xSSC+0.1%SDS; 10ml20xSSC,2
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