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一、Transwell小室制备
1.无基质胶Transwell小室制备
①包被基底膜:
用50mg/LMatrigel1:8稀释液包被Transwell小室底部膜的上室面,4℃风
干。假如须要在下室面铺FN的话,可将200ul枪头的尖端剪掉,吸取FN匀
称涂抹在小室的下面。用胶原(collagen)的话,一般配成0.5mg/ml,干脆用
枪吸了涂在膜上。
②水化基底膜:
吸出培育板中残余液体,每孔加入50ul含10g/LBSA的无血清培育液,37
℃,30min。另有tianjin_glioma战友供应的方法:在上室的聚碳酸酯膜上加
入稀释后的Matrigel(3.9ug/ul)60-80µl(留意体积不行太大,以刚把聚碳
酸酯膜浸湿为最好),置37℃30min使Matrigel聚合成凝胶。
2.有基质胶的Transwell小室制备
Chemicon公司的ECM550系列说明书要求,将小室放入培育板中,在上室
加入300µl预温的无血清培育基,室温下静置15-30min,使基质胶再水
化。再吸去剩余培育液。
二、制备细胞悬液
①制备细胞悬液前可先让细胞撤血清饥饿12-24h,进一步去除血清的
影响。但这一步并不是必需的。
②消化细胞,终止消化后离心弃去培育液,用PBS洗1-2遍,用含BSA
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的无血清培育基重悬。调整细胞密度至1-10×10,个人认为不要超过5×10。
详细试验时采纳密度要自己摸索,因为不同细胞,其侵袭实力是不同的。个
人阅历,细胞量过多,穿过膜的细胞会过多过快,假如最终用计数法统计
结果的话将难以计数;而过少的话,可能还没到检测的时间点,全部的细胞
都已穿过,因此最少也要保证在收样的时候,上室内还要有确定量的细胞
存在。个人认为,比照组和处理尽量不要分开计数,因为细胞数目的差异
会严峻影响试验结果。假如须要对细胞预处理而不得不分开计数,那么计
数确定要多重复几次,力求精确,尽量保证比照组和处理组细胞密度一样。
三、接种细胞
①取细胞悬液100-200µl加入Transwell小室,不同公司的、不同大小的
Transwell小室对细胞悬液量有不同要求,请参考说明书。24孔板小室一般
200µl。
②24孔板下室一般加入500µl含FBS或趋化因子的培育基,不同的培育
板加的量有不同要求,详细请参考说明书。这里要特殊留意的是,下层培
育液和小室间常会有气泡产生,一旦产生气泡,下层培育液的趋化作用就
减弱甚至消逝了,在种板的时候要特殊留心,一旦出现气泡,要将小室提
起,去除气泡,再将小室放进培育板。
③培育细胞:常规培育12-48h(主要依癌细胞侵袭实力而定)。时间点的
选择除了要考虑到细胞细胞侵袭力外,处理因素对细胞数目的影响也不行
忽视。
以我的课题为例,我运用的药物不仅会抑制肿瘤细胞侵袭力,还对细胞增
殖有明显抑制。我选择的药物浓度是用MTT筛选出的72h的IC50。用这个
浓度处理细胞,24h内对细胞增殖并无明显抑制,但24h后,抑制作用就起
先出现了。所以,用这个浓度来做Transwell,处理时间也必需限定在24h
内,否则一旦药物抑制了细胞增殖或者诱导出凋亡,使处理组细胞数目少
于比照组,那么就难以确定穿过膜的细胞比比照组少,原委是由于侵袭被
抑制引起,还是处理后细胞数目本身就比比照组少而引起的了。
时间过长不行以,同样,过短也不行,因为细胞内会有确定量的MMPs储
存,短时间内可能侵袭实力不会有太大变更。同时从药物被汲取进去,进
而发挥作用,影响MMPs表达,到最终释放到培育基中,还须要一个过程。
时间点的选择可尽量长点,也可选择多个时间点探讨时间依靠效应,但前提
是这个时间范围内细胞数目不能有明显变更。另外,我看到细胞在小室内
的形态不是正常培育贴壁的形态,而是圆形的,仍是悬浮时的形态,不过
会聚集成团,所以看到细胞不正常贴壁也没关系张,是正常现象
在培育过程中,膜下会渐渐有少量小气泡产生,这是正常现象,可不予处
理,但我遇到过培育一段时间后,膜下出现了大气泡,幸亏与时发觉,否则
后果将特别严峻。因此,个人建议,最好接种
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