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大肠杆菌化转流程

大肠杆菌化转（即大肠杆菌转化）是分子生物学研究中的一项基本技术，它允许外源DNA（如质粒DNA或重组DNA）导入大肠杆菌受体细胞中进行复制、增殖和表达。以下是详细的大肠杆菌化转流程：

一、实验准备

1.材料与试剂：

-大肠杆菌感受态细胞（如DH5α等）

-质粒DNA或重组DNA

-LB培养基（包括固体和液体培养基，可添加适当抗生素如Amp或Kan用于抗性筛选）

-无菌ddH2O

-20%IPTG（M/V）和2%X-gal（M/V）（用于蓝白斑筛选，可选）

-其他实验所需器材如超净工作台、酒精灯、玻璃涂棒、恒温培养箱、制冰机、恒温摇床、微量移液取样器等

2.培养基准备：

-制备LB液体培养基，高压蒸汽灭菌后冷却备用。

-制备LB固体培养基，加入琼脂粉并高压蒸汽灭菌，冷却至60℃左右时加入抗生素（如需要），倒入培养皿中待其凝固。

二、大肠杆菌转化步骤

1.感受态细胞处理：

-从超低温冰柜（通常为-80℃）中取出一管感受态细胞，立即置于冰上融化。可手指轻弹试管壁检查是否完全溶解，避免放置较长时间以保持高转化效率。

2.加入质粒DNA：

-在超净台中，向融化的感受态细胞中加入适量的质粒DNA（通常为1-10μL，DNA含量10-100ng），轻轻旋转或轻弹管壁使质粒DNA与感受态细胞混合均匀，避免剧烈晃动。

3.冰浴：

-将加入质粒DNA的感受态细胞置于冰上，冰浴20-30分钟，使DNA分子充分吸附到感受态细胞的表面。

4.热激：

-将感受态细胞与质粒DNA的混合物放入预热至42℃的水浴锅中进行热激处理，通常为30秒至90秒不等（具体时间根据实验需求而定）。热激后立即将离心管放回冰上，静置2-3分钟以冷却。

5.复苏：

-在超净台中向感受态细胞中加入适量无抗生素的LB液体培养基（通常为800-1000μL），轻轻混匀后置于37℃恒温摇床上，以200-220rpm的速度振荡培养1-2小时，使感受态细胞复苏并表达质粒DNA上的基因。

6.涂布平板：

-复苏结束后，将培养液进行低速离心（如4000-5000rpm离心1-2分钟），去掉大部分上清液，用剩余的少量培养液将细胞重悬。取适量细胞悬液（通常为100-300μL）均匀涂布在含有适当抗生素的LB固体培养基上。

7.培养与观察：

-将涂布好的培养皿先置于37℃恒温培养箱中30-60分钟，使表面液体渗透到培养基里。然后倒置培养皿，继续在37℃恒温培养箱中过夜培养（通常为12-16小时），直至单菌落出现。

8.后续处理：

-观察平板上长出的菌落克隆，记录菌落生长情况。根据实验需求，可进一步进行单克隆挑菌、菌落PCR鉴定、质粒抽提及测序等后续处理。

三、注意事项

-在整个实验过程中，必须保持无菌操作，避免污染。

-感受态细胞刚融化时转化效率最高，因此应避免长时间放置。

-热激处理是转化过程中的关键步骤，必须严格控制温度和时间。

-抗生素的浓度和类型应根据实验需求和质粒特性进行选择。

-在涂布平板时，要确保细胞悬液均匀涂布在培养基上，以获得良好的单菌落生长效果。