实验动物学实验报告(大鼠-小鼠)-小鼠的基本实验操作-大鼠的基本实验操作.pdf

实验一小鼠的基本实验操作

一、实验目的:通过实际操作，掌握小鼠的一般操作方法，包括小鼠的抓拿、标记、给药（灌

胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射）、取血（眶后静脉丛，摘眼球）、脊椎脱臼法

处死、大体解剖。

二、实验动物：昆明小鼠2只（1雌1雄）

三、实验步骤

1、抓取和固定，标记

2、去毛

3、给药：消化道、腹腔注射、尾静脉注射

4、取血：眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法

5、麻醉：氯胺酮腹腔麻醉

6、处死：脊椎脱臼法

7、解剖：

雄性：睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺（在膀胱下方，胶质状，透明）

雌性：双角子宫、卵巢

肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺

四、实验结果

1、抓取和固定标记：

抓取：抓小鼠的尾根部

固定：抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇

指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。并标记：

2、灌胃法：左手抓取小鼠固定后，右手持特制灌胃针，沿一侧口角进针，紧贴咽后壁，头

后仰以便伸直消化道，进针2/3后灌生理盐水0.5ml

3、注射给药：

腹腔注射：

从下腹部的两侧进针，进针时针与腹部成45°。进针后稍微晃动针，如无粘滞感则可

注射药物

尾静脉注射：一人固定小鼠，另一人用左手中指和拇指将尾拉直，食指托住尾部，在尾

动脉位置进针注射0.5ml生理盐水。注射完毕拔出针头，用无菌棉球压迫止血。

4、采血

从眼角内侧0.5cm处进针

眼球摘除法：左手抓取用固定小鼠，右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除，头朝下，眼

眶内血迅速流出。

5、麻醉：

0.5%氯胺酮腹腔麻醉：本小鼠重22g，按100mg/kg的药量给药，2分钟麻醉成功

6、处死：

脊椎脱臼法：按住头部，将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死

7、解剖：

雄性：寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺

雌性：双角子宫、卵巢3.7.2肾上腺：米粒大小

胰腺：位于胃下方，类似于脂肪组织，浑浊状3.7.4，胆囊：芝麻大小，浅绿色，

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半透明，甲状腺：紧贴环状软骨，另可解剖出胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏。

五、实验讨论

1、小鼠抓取的感受：

小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将

其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双

耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠

完全固定。如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作，如进行解剖实验则必须先行无

痛处死后再进行。

2、小鼠尾静脉注射感受：

首先，注射前尾巴用稍热的水浸泡几分钟，有利于注射；其次，先远后尽，不要一

开始就从尾根部，那样失败了不好办；再次，进血管后注意保持稳定，针尖很容易刺穿

血管的。

尾静脉就在尾巴的正左右两边，先用酒精用力擦，可以去掉部分角质，然后按住近

心端让充血，就很容易看到了。进针大概1～2厘米是最合适的。

尾静脉注射时，可用45~50度的温水浸润半分钟或用酒精擦拭，可使血管扩张，同

时也可软化表皮角质。以左手拇指和食指夹住鼠尾，使静脉充盈，中指帮助无名指和小

指捏住鼠尾末梢，右手持注射器（连5号细针头），针头与静脉夹角一般小于30度，从

距尾尖2-3厘米处进针，此处皮薄易进入，先抽回血，见到血后再缓慢注入少量药液，

如无阻力，表示针头已进入静脉，可继续注入。一般推注速度为0.05-0.10ml/秒，一次

注入量为0.05-0.25ml/10g体重。如反复注入，应尽可能从尾末端开始，以后向尾根部

方向移动注射。

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实验二大鼠的基本实验操作

二、实验目的:通过实际操作，掌握大鼠的一般操