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发酵实验报告

实验一摇瓶发酵法制备糖化酶

一、实验目的

（1）掌握摇床发酵法制备糖化酶的工艺流程及操作方法

（2）了解利用黑曲霉菌菌种发酵时的生长条件及注意事项

（3）熟练掌握实验过程中的无菌操作和培养条件的选择

二、实验仪器及试剂

菌种：黑曲霉

仪器：锥形瓶（500ml)、移液管、恒温水浴锅、秒表、50mL比色管、

牛皮纸、纱布（8层）、pH计。

药品：三水乙酸钠、冰醋酸、硫代硫酸钠、碘、氢氧化钠、硫酸、

可溶性淀粉、玉米粉、豆饼粉、麸皮

三、实验原理

摇瓶发酵是实验室常用的通风发酵方法，通过将装有液体发酵培养

基的摇瓶放在摇床上振荡培养，以满足微生物生长、繁殖及产生许多代

谢产物对氧的需求。它是实验室筛选好气性菌种，以及摸索种子培养工

艺与发酵工艺的常用方法。

葡萄糖淀粉酶（EC3.2.1.3）系统名为淀粉α-1,4-葡聚糖葡萄糖水

解酶，俗称糖化酶，是国内产量最大的酶品种。糖化酶对淀粉分子的作

用是从非还原末端切开α-1,4键，也能切开α-1,3键和α-1,6键，产

生葡萄糖。

糖化酶有催化淀粉水解的作用，能从淀粉分子非还原末端开始，分

解α-1,4-葡萄糖苷键生成葡萄糖。葡萄糖分子中含有醛基，能被次碘

酸钠氧化，过量的次碘酸钠酸化后析出碘，再用硫代硫酸钠标准溶液滴

定，计算酶活力。

四、实验步骤

1.培养步骤

1.1种子培养基制备及灭菌

将新鲜土豆去皮切块，称取200~300g土豆块放入500mL烧杯中，

加入一定量水，在电炉上煮沸至土豆块熟透，用120目纱布过滤，滤渣

反复用一定量水清洗、过滤2次，合并各次滤液且定容至1000mL即得

土豆汁。取一定体积的土豆汁，在其中加入5%的蔗糖，溶解摇匀并调

pH至5.5，即得种子培养基。将适量种子培养基倒入锥形瓶（250ml），

用纱布塞塞住管口，并用牛皮纸包扎，置灭菌锅中，于121℃下灭菌30min。

待灭菌完毕，冷却取出。

1.2发酵培养基制备及灭菌

取6只500mL摇瓶，分别按装液量100、200、300mL配制培养基（玉

米粉6%、豆饼粉2%、麸皮1%），加水后稍微摇动，使原料湿润，浸入水

中。用8层纱布包扎瓶口，再加牛皮纸包扎。置灭菌锅中，于121℃下

灭菌30min。

1.3发酵培养基接种：将已生长好的菌种，在无菌条件下，按照10%

的接量（8%-12%）接种到发酵培养基上。

1.4发酵培养基发酵：将摇瓶固定在摇床上，培养温度为31℃，转

速为120r/min，培养时间96h。显微镜观察菌丝形态，用试纸测发酵液

pH，测定酶活力。摇瓶培养时观察各种摇瓶机的结构。

2.糖化酶活力测定

2.1待测酶液的制备：

精确吸取液体酶1.00mL，先用少量的乙酸缓冲液溶解，并用玻璃棒

捣研，将上清液小心倾入容量瓶中。沉渣部分再加入少量缓冲液，最后

全部移入容量瓶中，用缓冲液定容至刻度（估计酶活力在100~250u/mL

范围内），摇匀。通过4层纱布过滤，滤液供测定用。

2.2酶活力测定：

于甲、乙两支50mL比色管中，分别加入可溶性淀粉溶液25mL及缓

冲液5mL，摇匀后，于40℃恒温水浴中预热5min。在甲管（样品）中加

入待测酶液2mL，立刻摇匀，在此温度下准确反应30min，立刻各加入

氢氧化钠溶液0.2mL，摇匀，将两管取出迅速冷却，并于乙管（空白）

中补加待测酶液2mL。吸取上述反应液与空白液各5mL，分别置于碘量

瓶中，准确加入碘溶液10mL，再加氢氧化钠溶液15mL，摇匀塞紧，于

暗处反应15min。取出，加硫酸溶液2mL，立即用硫代硫酸钠标准液滴

定，直至蓝色刚好消失为其终点。

2.3酶活力计算：

样品酶活力（u/g或u/mL）=579.9×(A-B)c×n式中：A与B分别

为空白、样品消耗硫代硫酸钠标准溶液的体积，mL；c为硫代硫酸钠标

准溶液的浓度，mol/L；n为稀释倍数。

五、数据分析

比较不同装液量下的菌体形态特征、酶活力，将结果填入下表：

装液量/mL