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生物技术实践;一、植物组织培养
1.原理:植物细胞的全能性
2.基本过程:;(1)脱分化和再分化的比较;3.影响因素
(1)外植体的选择:材料本身的种类、年龄、保存时间长短等。;(3)植物激素
①常用激素:生长素和细胞分裂素。
②使用激素顺序不同对试验结果的影响:;③生长素用量比细胞分裂素用量,其比值不同,对细胞发育的方向影响不同:
比值高时:有利于根的分化,抑制芽的形成
比值低时:有利于芽的分化,抑制根的形成
比值适中:促进愈伤组织的形成
(4)温度:一般将温度控制在18~22℃
(5)pH:一般将pH控制在5.8左右
(6)光照:每日用日光灯照射12h;4.实验操作步骤
(1)制备MS固体培养基:配制各种母液→配制培养基→灭菌
(2)外植体消毒:酒精溶液消毒→无菌水清洗→次氯酸钠(或氯化汞)溶液→无菌水清洗
(3)接种
(4)培养
(5)移栽
(6)栽培;5.月季的花药培养
(1)被子植物的花粉发育
小孢子母细胞→4个小孢子→1个小孢子(单核居中期)→1个小孢子(单核靠边期)→花粉粒(含一个花粉管细胞核和一个生殖细胞核);(3)影响花药培养的因素
①不同植物的诱导成功率很不相同;
②同种植物的生理状况;
③花粉发育时期;
④亲本植株的生长条件、材料和低温预处理以及接种密度等。;6.花粉植株的产生和植物茎的组织培养的比较;二、蛋白质的提取和分离
1.蛋白质的理化性质
(1)具有两性
(2)可以发生水解反应
(3)可溶性、具有胶体的性质
(4)盐析
(5)蛋白质的变性
(6)颜色反应;2.操作步骤
蛋白质的提取和分离一般为四步:
①样品处理→②粗分离→③纯化→④纯度鉴定
(1)样品处理;(1)红细胞的洗涤
①采集血样→②低速短时间离心→③吸取血浆→④盐水洗涤→⑤低速离心→⑥重复④⑤步骤三次
(2)血红蛋白的释放
将洗涤好的红细胞倒入烧杯中,加蒸馏水到原血液的体积,再加40%体积的甲苯,置于磁力搅拌器上充分搅拌10min。;(3)分离血红蛋白溶液
将搅拌好的混合液转移到离心管中,以2000r/min的速度离心10min后,试管中的溶液分为4层:
第1层(最上层):甲苯层(无色透明)
第2层(中上层):脂溶性物质沉淀层(白色薄层固体)
第3层(中下层):血红蛋白的水溶液层(红色透明液体)
第4层(最???层):杂质沉淀层(暗红色);(4)透析
取1mL的血红蛋白溶液装入透析袋中,将透析袋放入盛有300mL的物质的量浓度为20mmol/L的磷酸缓冲液中,透析12h,目的是除去样品中相对分子质量较小的杂质。
(2)凝胶色谱分离
①制作凝胶色谱柱
②装填凝胶色谱柱
③样品加入和洗脱;(3)结果分析与评价
①对于血液样品的处理,需要经过洗涤、释放、分离、透析几个步骤。由于血红蛋白与氧气结合变成鲜红色,与二氧化碳结合变成暗红色,所以刚分离后的血红蛋白溶液呈红色。
②红色区带的移动是实验成功与否的标志。红色区带在洗脱过程中均匀一致移动,说明实验分离成功。;三、PCR技术的基本操作和应用
1.细胞内DNA复制条件分析:;2.DNA分子复
制的人工控制
解开螺旋:在80~100℃时,DNA双螺旋打开,形成两条DNA单链,称为变性。
恢复螺旋:在50℃左右时,两条DNA单链重新形成双螺旋结构,称为复性。;3.PCR的反应过程
变性:在95℃时DNA解旋
复性:在50℃时引物与DNA单链结合
延伸:在72℃时合成DNA子链(两个引物间的序列);4.实验操作
(1)PCR反映体系:缓冲液、DNA模板、四种脱氧核苷酸原料、热稳定DNA聚合酶、两种RNA引物、水
(2)实验操作步骤:
①按照PCR反应体系配方配制反应液
②将PCR反应体系50μL用微量移液器转移到微量离心管中
③将微量离心管放到PCR仪
④设置PCR仪的工作参数
⑤DNA在PCR仪器中大量扩增;⑥水浴法:将微型离心管依次在95℃、55℃、72℃的恒温水浴锅中循环处理相应时间
5.实验注意事项:
(1)避免外源DNA污染:所用仪器、缓冲液、蒸馏水等必须进行高压灭菌
(2)缓冲液和酶分装成小份,-20℃保存
(3)每添加一种反应成分,更换一个移液器的枪头
(4)混匀后离心处理,使反应液集中在离心管底部;1.植物细胞表现出全能性的条件和步骤
植物细胞要表现出全能性,需要经过以下几个步骤:
成熟细胞→分生细胞→胚状体→完整植株
成熟细胞→愈伤组织→生根出芽→完整植株
诱导细胞的脱分化,需要的条件:①离体;②给予适宜营养和外界条件(包括光照、植物激素等);2.植物组织培养培养基、无土栽培培养液、微生物培养基的比较
无土栽培:液体培养液;不含有有机物及植物激素;培养过程中不需要更换培养液;不需要灭菌;
植物组织培养基:固体培养基;含有矿质元素、蔗糖、维生素、植物激素、有机添加
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