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大鼠肾移植模型制作

大鼠肾移植模型目前仍是肾移植实验研究中非常有价值和常用的动

物模型。这一模型具有许多优点：显微外科技术的应用使建立稳定可

靠的实验动物模型成为可能；大鼠繁殖快，成本较低；有大批基因型

明确的纯系大鼠供选择如SD大鼠、Wistar大鼠等。这一术式的基

本方法如下。

一、手术器械

显微外科手术器械包，手术显微镜1台，自制S拉钩（用橡皮筋一

端带弯成S形大头针）4个，眼科剪1把，其它外科器械若干及纱

布、棉球、棉片和橡皮条等。

二、实验动物及麻醉

根据实验目的选择同一品系或不同品系的大鼠，一般8～10周龄，

体重150～250g，供鼠雌雄不限，受鼠最好为雄性大鼠，供受者

体重相仿。腹腔注射0.3％戊巴比妥2ml/100g或氯胺酮

10mg/100g体重或已醚吸入麻醉均可。

三、供肾切取术

腹部正中切口，切开皮肤、腹直肌和腹膜，充分暴露左肾，以湿纱布

覆盖周围组织器官。

1.供肾血管游离：使用棉签和无齿眼科镊钝性分离左肾动静脉及其分

支，游离与其连接的腹主动脉和下腔静脉，结扎肾上腺动、静脉。在

游离完毕的左肾动脉上方和右肾动脉下方的腹主动脉部和腹主动脉

远端及左肾静脉上下方的下腔静脉各以1号细丝线围绕，勿结扎。

2.左肾原位灌洗：以Lee氏夹阻断左肾动脉下方的腹主动脉血流，

以血管钳夹闭腹主动脉和下腔静脉远端，在肾动脉以下的腹主动脉上

切一小口插管，注入500u/ml肝素等渗盐水2ml使全身肝素化，

然后相继结扎左肾动脉以上的腹主动脉和左肾静脉以下的下腔静脉，

在左右肾静脉开口之间剪断下腔静脉，进行低温灌洗。用4℃等渗盐

水10ml/min自腹主动脉插管处推注，灌洗5分钟，见左肾和附

属血管完全苍白，停止灌注。

3.输尿管、膀胱分离：以小弯蚊式钳轻轻提起膀胱底，钝性分离膀胱

和输尿管，并逐渐延伸至左肾门，注意适当保留部分输尿管周结缔组

织（其内有输尿管滋养血管），整块剪下左肾肾血管、灌洗段腹主动

脉和下腔静脉、左输尿管及膀胱，立即置入4℃平衡盐溶液中保存。

4.供肾处理：4℃平衡盐溶液冰浴中修剪供肾血管、输尿管和膀胱。

把连接肾动脉的腹主动脉修剪成一3×2mm2的椭圆形动脉瓣，并

将连接左输尿管的膀胱亦修剪成直径3mm的膀胱瓣。

四、供肾原位移植术

受者麻醉后，将肠管推向右侧，湿纱布保护内脏器官和周围组织，用

自制拉钩牵引暴露左肾及其周围组织。

1.受者血管游离：如前述钝性分离左肾动、静脉及其分支，并分离此

处下腔静脉、腹主动脉和左输尿管肾门端，仔细除去左肾动脉根部腹

主动脉血管外结缔组织，并结扎此处腹主动脉分支。用眼科剪锐性分

离左肾，4号丝线结扎肾动、静脉远心端和左输尿管肾门部，将连有

左肾动脉根部的腹主动脉完全分离，小心去除血管外结缔组织，并结

扎此处分支血管。

2.重建血管：将供肾置于腹部切口左侧缘，医用冰棉片覆盖供肾，术

中若发现冰屑融化，需不断补充。在分离好的腹主动脉上下方各置一

Lee氏夹，阻断腹主动脉血流，结扎并剪掉左肾动脉残端，在此处制

备与供肾动脉瓣一致的纵行切口，肝素（25IU/ml）生理盐水冲洗

管腔内残余血，用连续缝合法端－侧缝合腹主动脉瓣与受者腹主动脉

纵行切口；肾静脉口径较大，可在显微镜下做供受者之间肾静脉端－

端吻合。动静脉吻合完毕，同时松开远近端血管夹，开放血流，移植

肾色泽逐渐红润，明亮，肾动脉搏动明显，肾静脉充盈，表示血运顺

畅。如有漏血，以棉球轻压片刻，即可止血。血供好的供肾可见输尿

管开口处尿液逐渐流出，输尿管营养血管供血良好。

3.尿路重建：观察供肾血运良好后，即行输尿管膀胱瓣和受者膀胱吻

合术。常规采用端－端吻合或端－端套管吻合及带膀胱瓣的端－侧吻

合，现多采用后一术式。在受者膀胱顶部剪一直径2.5cm切口，调

整好供肾输尿管位置，勿扭曲，以6-0无损伤缝线间断全层缝合，

完成后再次检查供者输尿管是否扭曲。移植术毕，缝合腹壁切口。

输尿管膀胱瓣与受者膀胱吻合示意图

受者自体肾切除：多主张择期手术，术后3天即可切除自体右肾。

其它肾血管重建方式：主要为袖