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葡聚糖凝胶层析法别离蛋白质

实验简介：凝胶层析法是用一般的柱层析法使分子量不同的溶质通过具有分子筛效应的介质(如葡聚糖凝胶)，从而到达别离提纯的目的。凝胶层析设备简单，操作简便，条件温和，已成为别离分析蛋白质等生物大分子不可缺少的实验手段。

一、实验目的

1、掌握葡聚糖凝胶柱层析法的工作原理及根本操作技术。

2、掌握蛋白质别离纯化的一般操作技术。

二、实验原理

凝胶层析是按溶质分子大小不同而进行别离的一种层析技术，当溶质分子大小不同的样品溶液通过凝胶柱时，由于凝胶颗粒内部的网络结构具有分子筛作用，分子大小不同的溶质就会受到不同的阻滞作用。本实验采用葡聚糖凝胶G-50作为固相载体，它适用于相对分子质量范围在1500～30000之间的多肽与蛋白质的别离。当蓝色葡聚糖-2000(相对分子质量在200万以上，蓝色)，细胞色素C(相对分子质量12800，红色)和重铬酸钾(相对分子质量294，黄色)的混合物流经层析柱时，三种物质的分级别离明显可见。蓝色葡聚糖因完全被排阻在凝胶颗粒之外而首先流出，细胞色素C渗入凝胶颗粒内部而其次流出，重铬酸钾那么完全渗入凝胶内部最后流出。通过作洗脱曲线便可清楚地表示出葡聚糖凝胶G-50对这三种物质的别离效果。

样品中的各组分的流出顺序，可用有效分配系数Kav表示：

Kav=(Ve-Vo)/(Vt-Vo)

上式中，Kav指的是分子量不同的溶质在凝胶内部和外部的分配系数，只与被别离物质分子的大小和凝胶颗粒孔径的大小分布有关，而与柱的长短粗细无关。

外水体积Vo(outervolume)指基质颗粒之间体积的总和；

内水体积Vi(innervolume)指基质颗粒内部体积的总和；

基质体积(Vg)指基质自身所具有的体积。V。、Vi和Vg都是随着床体积和基质性质变化而变化的；

洗脱体积Ve(elutionvolume)指从加样到柱出现最大浓度(峰)时所流过的洗脱液的体积(如图1)。

床体积Vt(totalvolume)指膨胀后的基质在层析柱中所占有的体积。Vt是基质的外水体积(Vo)和内水体积(Vi)以及基质体积(Vg)的总和(如图2)。

即：Vt=Vo+Vi+Vg=Vo+Vi

图1凝胶层析柱洗脱的3局部示意图

图2凝胶柱床中Vt，Vo等关系示意图

三、实验用品

1、实验试剂

(1)葡聚糖G-50(SephadexG-50)。

(2)洗脱液：pH7.5的0.05mol/LTris-HCl缓冲液。

(3)样品液：蓝色葡聚糖2000、重铬酸钾和细胞色素C(各2～3mg/mL，用洗脱液配制)。

2、实验器材

层析柱(1×20cm)，局部收集器，恒流泵，梯度混合仪

四、实验操作

1、凝胶处理：将SephadexG-50参加蒸馏水内，室温溶胀6h或沸水浴中溶胀2h。沸水浴溶胀不但节约时间，而且有消毒(杀死污染的细菌)和排除胶粒内部气泡的作用。用倾泻法除去凝胶上层水及细小颗粒，反复用蒸馏水洗涤直至无细小颗粒为止(细颗粒存在会影响层析的流速)，然后放到真空枯燥器内抽气。凝胶储存在洗脱液内，备用。

2、装柱：垂直装好层析柱，旋紧下盖，向层析柱内参加蒸馏水达柱总长度约1/4。然后将处理好的凝胶在烧杯内用2倍的溶液调成悬浮液，自柱顶端沿管内壁缓缓参加柱中至柱顶，翻开底部出水口，随着水的流出，不断注入搅拌的凝胶混悬液，直至床体积沉降至离柱顶约3～4cm为止。装好的凝胶柱要求床面水平、床体均匀无层次、无纹路或气泡等。否那么必须重新装柱。

要注意在任何时候不要使蒸馏水的液面低于凝胶外表，否那么水分挥发，凝胶干裂，别离效果较差，并有可能混入气泡，影响液体在柱内的流动。

3、平衡：柱装好后，旋紧上盖，接上恒流泵，翻开出口，用2倍于床体积的洗脱液平衡，流速为0.5mL/min，使层析柱压实并平衡。注意调节流速以防止流速过大及干柱现象。

4、层析床校正：首先肉眼观察层析床是否均匀，有无气泡和分层，床外表是否平整，然后用蓝色葡聚糖进行层析效果的检查。在层析柱中参加lmL(2mg/mL)蓝葡聚糖2000，然后用洗脱液进行洗脱(流速同前)，如移动的指示剂色带狭窄、均一，那么说明装柱良好，检查后再经洗脱平衡即可使用，否那么应重新装柱。

5、加样：翻开层析柱下端出口，当洗脱液的液面恰好盖住床面时，关闭出口。小心地用滴管均匀地沿管壁在床面上参加7～8滴样液，注意防止冲坏床面。再翻开底端出口使样液渗入凝胶内，但又不露床面，再用滴管参加少量洗脱液，把床面及附近内壁上的样品洗入胶柱。如此冲洗三次。冲洗时应尽量防止样品稀释过多，否那么等于加大加样量而影响别离效果。当洗脱液进柱但又不露床面时，将洗脱液加至层析柱上口以下1cm处接上恒流泵，调好流速，开始洗脱。

6、洗脱与收集：调节洗脱液流速为1mL/min。开始用局部收集器收