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一、实验原理步骤:
1、分子克隆总流程:
分子克隆:在分子水平上提供一种纯化和扩增特定DNA片段的方法。常含有目的基因,
用体外重组方法将它们插入克隆载体,形成重组克隆载体,通过转化与转导的方式,引
入适合的寄主体内得到复制与扩增,然后再从筛选的寄主细胞内分离提纯所需的克隆载
体,可以得到插入DNA的许多拷贝,从而获得目的基因的扩增。
流程:
(1)带有目的基因的DNA片段的获得——PCR引物设计,PCR获得。
(2)重组DNA分子的构建——与载体酶切连接。
(3)重组DNA分子的转化和重组克隆的筛选——转化,培养,筛选
(4)检测——菌落PCR检测,粗提质粒检测,酶切检测,精提质粒,测序。
2、质粒DNA的提取及鉴定——碱裂解法
原理:
根据共价闭合环状质粒DNA和线性染色体DNA在拓扑学上的差异来分离质粒DNA。
•在pH12.0-12.5,线性的DNA双螺旋结构解开而被变性,尽管在这样的条件下,
质粒DNA的氢键断裂,但两条互补链仍紧密结合。
•当加入pH4.8的KAc高盐缓冲液中和pH至中性时,共价闭合环状的质粒DNA
复性迅速而准确,而线性的染色体DNA的两条互补链彼此已完全分开,复性慢,缠
绕形成网状结构。通过离心,染色体DNA与RNA、蛋白质-SDS复合物等一起絮状沉
淀下来而被除去。
步骤:1、细菌培养和收集
①将3ml含Kan的LB液体培养基加入到试管中,接入含质粒的大肠杆菌,
37℃振荡培养过夜。(已完成)
②取2.5mL培养物倒入微量离心管(EP管)中,10000rpm离心1min,吸去
培养液。
2、细菌裂解及质粒的提取
③将细胞沉淀悬浮于100ul溶液I中,充分震荡混匀。
④加200ul溶液II(新鲜配制),盖紧管盖,轻轻混匀内容物,将离心管放冰上
5min。
⑤加150ul溶液III(冰上预冷),盖紧管口,轻轻颠倒数次使混匀。冰上放置
10min。
⑥12000rpm离心10min,将上清转至另一EP管(作好标记)中。
3、质粒的纯化
⑦向上清中加入等体积(450ul)酚:氯仿(1:1)(注意下层是有机相),反复
混匀。
⑧12000rpm,离心2分钟,将上清小心地转移到另一离心管(标记!)中
⑨加入等体积(450ul)氯仿:异戊醇(24:1),反复混匀。
⑩12000rpm,离心2分钟,取上清液于新的EP管中。
4、质粒的浓缩
①加入2倍体积(900ul)无水乙醇,混匀后,室温放置10-15min。
②12000rpm离心5分钟,倒去上清液,把离心管倒扣在吸水纸上,吸干液体。
③用1ml70%乙醇洗涤质粒DNA沉淀,振荡并离心,12000rpm离心2分钟,倒去上清
液,空气中干燥5-10min。
5、质粒的溶解和保存及电泳检测
④加20ulTE缓冲液,其中含有100ug/ml的胰RNA酶,使DNA完全溶解。
⑤-20℃保存
⑥1%胶,恒压150V,电泳10-20分钟
要点:载体定义:基因工程中携带目的基因进入宿主细胞进行扩增和表达的工具。
类型:大肠杆菌中的质粒、噬菌体、M13噬菌体、噬菌粒外,还有酵母人工染色体载体及
动、植物病毒载体等。
条件:复制子、咸志梅单一识别位点、标记基因、适合的拷贝数
•碱解法、煮沸法(cDNA、pDNA变性、复性不同)
•苯酚抽提法(酸性、低离子强度时超螺旋在水相分布)
•CsCl法(EB插入造成DNA浮力密度不同)
•SDS裂解法(高盐浓度
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