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电针对阿尔茨海默病大鼠海马PKC和GDNF表达的影响.pdfVIP

电针对阿尔茨海默病大鼠海马PKC和GDNF表达的影响.pdf

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电针对阿尔茨海默病大鼠海马PKC和

GDNF表达的影响

作者:张海燕刘忠锦冯化杰等

来源:《中国当代医药》2013年第07期

摘要[]目的探讨电针对阿尔茨海默病(alzheimer′sdisease,AD)大鼠海马蛋白激酶C

(proteinkinaseC,PKC)和胶质细胞源性神经营养因子(glialcellline-derivedneurotrophic

factor,GDNF)表达的影响。方法Morris水迷宫筛选40只健康Wistar大鼠随机分4组。正常

组不给予任何处理,其余3组大鼠采用链脲霉素(STZ)所致AD模型,造模后模型组不治

疗,电针组针刺双肾俞、双太溪、双足三里、百会、大椎等穴位治疗,西药组氢溴酸加兰他敏

灌胃,疗程为4周。免疫组化法检测PKC和GDNF的表达。结果免疫组化显示模型组大鼠

PKC和GDNF表达减少,电针组和西药组大鼠表达增加,差异有统计学意义(P0.05)。结

论电针可能通过对AD大鼠海马PKC和GDNF表达增强的影响,对神经元起到保护作用。

关键词[]电针;阿尔茨海默病大鼠;蛋白激酶C;胶质细胞源性神经营养因子

中图[分类号]R-33[文献标识码]A[文章编号]1674-4721(2013)03(a)-0020-02

阿尔茨海默病是老年人常见的神经系统退行性疾病,主要病理特征为细胞外老年斑中β淀

粉样蛋白的沉积、细胞内由成对的过度磷酸化的Tau蛋白组成的神经原纤维缠结[1],其病因

及发病机制尚不清楚,多种治疗方法目前正在探索中[2]。神经营养因子(NTFs)与神经系统

疾病密切关系。而胶质细胞源性神经营养因子(GDNF)是神经营养因子家庭中的一名新成

员。关于电针治疗AD大鼠海马GDNF表达的方面比较少,本研究主要观察电针对AD大鼠海

马PKC和GDNF表达的影响。

材料与1方法

动物1.1选择及分组

清洁级健康Wistar大鼠45只,雄性,体重200~250g,白求恩医大实验动物中心提供,

合格证号2010002,经水迷宫测试筛选40只,随机分为4组:正常组、模型组、西药组和电

针组,正常组常规饮水和饲料。其余3组大鼠均采用链脲霉素(STZ)所致AD模型,模型组

造模后不治疗。参照华兴邦等[3]的大鼠穴位图谱,电针组针刺双肾俞(第二腰椎棘突下左、

右侧旁开7mm)、双足三里(腓骨小头下约5mm处)、百会(顶骨正中)、大椎(第七颈

椎与第一胸椎间)[4]等穴治疗,用0.250.25mm×华佗牌无菌毫针针刺,连接KWD-808全能

脉冲电疗仪,电压为2V,频率为30Hz,,强度以肢体局部轻微颤动为适。西药组采用氢溴

酸加兰他敏灌胃0.5~1.0mg/(kgd·),治疗4周。

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主要试剂和仪器1.2

氢溴酸加兰他敏,链脲霉素STZ(注射前将STZ溶于0.9%氯化钠溶液)。PKC免疫组化

检测试剂盒(博士德生物工程有限公司),GDNF免疫组化检测试剂盒(博士德生物工程有限

公司),脑立体定位仪,水迷宫,Hans电针仪,Olympus显微镜。

模型复制1.3

水合氯醛10%4mL/kg麻醉大鼠,在头部做正中矢状切口,坐标为脑表面下3.5mm,前囟

1.5mm,矢状缝左右旁开1.5mm。在每侧侧脑室注射10%链脲霉素10μL,创口缝合。3d后

重复注射一次。

各组大鼠标本的制备1.4

大鼠治疗4周后,麻醉后暴露出心脏,左心室插入灌注针头,快速灌入无菌生理盐水冲洗

组织内血液,同时剪开右心耳,冲洗至肝脏变白,然后灌注4%多聚甲醛,当大鼠尾巴、四肢

僵硬时断头取脑,分离海马[5]。一侧海马装入冻存管,一侧置于4%多聚甲醛中,浸泡固定,

取海马标本,脱水包埋切片。

免疫组1.5织化学染色大鼠海马PKC和GDNF

PKC、GDNF免疫反应阳性产物为棕黄色点状颗粒,主要分布在胞浆。采集免疫组化染色

图像,用Imagepro-Plus

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