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实验目录;实验一植物基因组DNA提取;4.核酸是生物有机体中的重要成分,在生物体中核酸通常与蛋白质结合在一起,以核蛋白的形式存在。核酸分为DNA和RNA,在真核生物中,前者主要存在于细胞核中,后者主要存在于细胞质和核仁里。在制备核酸时,通过研磨破坏细胞壁和细胞膜,使核蛋白被释放出来。
5.去除蛋白的方法,通常采用SDS/CTAB等去污剂使蛋白变性,与核酸分离,从而从材料中直接提取DNA.
6.酚是高效的蛋白质变性剂,氯仿除了进一步去除蛋白,也可以去除残留的酚。
本实验是通过SDS法提取拟南芥基因组DNA。
;SDS是一种阴离子去污剂,能与细胞膜上的蛋白质结合,在65°C高温下能有效裂解细胞膜,使基因组DNA释放出来。
在用SDS-苯酚法提取基因组时,酚能够使SDS-蛋白质复合物中的蛋白质变性,从而使蛋白质和水溶性的DNA分离。
(此法不适用于提取多糖含量较高的植物基因组DNA提取。);
1.掌握植物基因组DNA分离、纯化原理
2.通过SDS法提取拟南芥基因组DNA。;仪器及耗材:研钵、微量移液器及吸头、EP管、台式离心机。
材料:拟南芥小苗
试剂:DNAExtractBuffer(0.2MNaCl,25mMEDTA,0.5%SDS,pH7.5);70%乙醇;酚;氯仿;异丙醇;RNase
;实验步骤;核酸—DNA和RNA所含碱基的苯环结构(嘌呤环和嘧啶环)的共轭双键具有紫外吸收的特性,它们在260nm处有最大的吸收峰。因此,可以用260nm波长进行核酸含量测定。
波长为260nm时,DNA或RNA的光密度的大小不仅与总含量有关,也与它们的不同构型有关。
标样:DNA浓度为1μg/mL时,OD260=0.02
当OD260=1时,双链DNA含量约为50μg/mL
单链DNA含量约为37μg/mL
RNA含量约为40μg/mL
DNA浓度(μg/μL)计算:50×OD260读数
RNA浓度(μg/μL)计算:40×OD260读数
;9;EDTA的作用:抑制内外源DNase的活力。
加螯合剂(EDTA)除去酶的辅因子(Mg2+),使酶的活性丧失。;实验二PCR克隆目的基因;PCR原理
FLASH演示;TaqDNAPolymerase
1988年Saiki等从水生嗜热杆菌(thermusaquaticus)中提取耐高温的TaqDNA多聚酶(TaqDNAPolymerase),此酶在93℃下反应2h后其残留活性是??来的60%。
缺点:
TaqDNAPolymerase只有5’→3’聚合酶活性,但没有3’→5’外切活性,无法消除突变和错配,碱基错误掺入率可达10-4/碱基/循环;PfuDNAPolymerase
PfuDNA聚合酶是已知保真度最高的聚合酶,来自于Pyrococcusfuriosis菌株,不仅具有掺入反应迅速及热稳定性高的优点,更是当前市场上所有DNA聚合酶中掺入出错率最低的一种。
优点:Pfu具有3’→5’校阅功能,其错配率分别仅为10-7。
缺点:效率低,扩增片段较短;TaqPlusDNAPolymerase
是Taq和PfuDNA聚合酶的混合物,与TaqDNA聚合酶相比,具有扩增长度增加(简单模板可有效扩增20kb,复杂模板可有效扩增10kb),保真度好的特点;与PfuDNA聚合酶相比,具有扩增速度快,反应效率高的优势。;PCR反应体系组成;1.模板;2.引物;引物设计原则;4种dNTP;Mg2+;DNA聚合酶;DNA聚合酶单位定义:1个酶单位是指在74℃下,30min内,使10nmol的dNTP掺入到核酸中所需的酶。
不同公司提供的酶U的定义也不同。;反应缓冲液;缓冲液
10mmol/lTris.Cl
提供适合反应的pH值(pH8.4)
50mmol/lKCl
促进引物退火
10μg/ml明胶或血清白蛋白,二硫苏糖醇
为Taq酶的保护剂,稳定酶的活性;PCR反应主要参数:
1.预变性:94°C,3--5min
2.变性:94°C,30s-1min
3.复性:56°C,20s--2min
4.延伸:72°C,30s--3min
5.总延伸:72°C,10min;
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