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医学机能学实验;;;;机能学实验基本技能训练;【实验目的】
1.熟悉常用实验动物的基本知识。
2.掌握小鼠的捉拿、给药、处死等基本操作技能。
【实验动物】
小鼠,体重18~22g,雌雄兼用。
【实验材料】
实验器材:灌胃器、手术剪、手术镊、注射器(1mL)、玻璃钟罩、普通天平、透明尺等。
药品与试剂:络合碘、生理盐水、5%炭末阿拉伯胶。
【实验步骤】
一、观看实验录像
1.实验动物的基本知识,如动物的体重、年龄、性别、种系,实验动物的捉拿、给药、标号、麻醉方法等。
2.药物的基本作用。;二、基本操作训练
(一)小鼠的捉拿
小鼠可采取双手法和单手法两种捉拿形式。
双手捉拿法:右手提起鼠尾,放在粗糙面上或鼠笼盖上,向后方轻拉鼠尾,趁其向前挣扎逃跑之际,迅速用左手食指和拇指抓住小鼠的两耳及头颈部皮肤,翻转鼠体于手掌中,以左手无名指和小指压其尾根部于手掌尺侧,固定于手中,如图4-1所示。
单手捉拿法:用左手将小鼠置于鼠笼盖或粗糙面上,用左手手掌尺侧及小指、无名指夹住尾根部,然后再用左手拇指与食指捏住双耳及头颈部皮肤,如图4-2所示。
(二)小鼠的称重
将小鼠放在电子秤上进行称重。
;(三)小鼠的标号
不同的研究室有习惯的标号方法,图4-3所示为用络合碘做标记。一般可从小鼠的右前肢开始标记1号,右腹中为2号,右后肢为3号,头部为4号,背部为5号,尾根部为6号,左前肢为7号,左腹中为8号,左后肢为9号,10号为空白,如图4-4所示。
;(四)小鼠的给药方法
1.灌胃法:采用双手法或单手法捉拿小鼠后,使小鼠腹面朝上,右手持灌胃器,从小鼠口角插入口腔内,并使口腔和食道成一直线,经舌面紧贴上颚进入食道,进针2~3cm可注药,灌药量一般为0.1~0.3mL/10g体重,如图4-5和图4-6所示。若手法正确,则进针顺利;若进针遇到阻力,不能强插,应退出重插,以免刺破食管或误入气管,使小鼠死亡。;2.腹腔注射法:左手固定小鼠,使腹部面朝上,头呈低位,右手持注射器,在小鼠右下腹部进针,针头与腹平面成45°角,刺入腹腔会有落空感(抵抗力消失),此时应保持针头不动,推入药液,一次注射量为0.1~0.2mL/10g体重,如图4-7所示。注意勿在上腹部进针或使针头向上,以避免刺伤腹部内脏。
;3.尾静脉注射法:小鼠多采用尾静脉注射法,先将小鼠固定于固定器内或玻璃罩内,使尾巴露在外面,必要时可用45~50℃的温水浸泡尾部,或用75%乙醇擦拭尾部,使尾部血管充分扩张,选左、右两侧的一根充盈的静脉,用左手的拇指和食指捏住尾巴的末端,右手持注射器(4号针头),以30°角进行静脉穿刺,推注药液无阻力,并可见沿静脉血管出现一条白线,表明针头确实在血管内,可继续推完药液,如图4-8所示。一次注射量为0.05~0.1mL/10g体重,注射完毕,拔出针头,用手指按住进针部位止血。若推注药液时阻力很大,且局部皮肤发白发硬,说明针头不在静脉内,需拔出针头重新穿刺。应注意注射时先从尾梢开始,逐渐向尾根部移动进针点。
;4.皮下注射法:两人配合操作时,助手将小鼠头与尾牵向两端并固定,术者左手提起小鼠背部皮肤,右手持注射器刺入皮下,当针头能左右摆动时,可注药,注入量一般为0.1~0.2mL/10g体重。拔针时,左手捏住针刺部位,防止药液外漏。一人操作时,可把小鼠放置于粗糙的金属网上,左手拉住鼠尾,小鼠会努力向前移动,此时,右手持注射器迅速刺入背部皮下,注入药液。
5.肌肉注射法:将针头倾斜迅速刺入大腿外侧肌肉,回抽针栓若无回血,将药物注入,一般选肌肉发达、无大血管通过的部位,多选臀部,如图4-9所示。药物水溶液肌肉注射时吸收十分迅速,适用于油溶液和某些刺激性物质。参考给药量为小鼠给药量每次小于0.05mL。;(五)小鼠的处死方法
1.颈椎脱位法:用左手固定鼠颈部,右手捏住鼠尾,用力向后上方牵拉,听到或感到小鼠颈部有“咔嚓”声响,表明颈椎脱位,脊髓断裂,小鼠瞬间死亡,如图410所示。
2.断头法:用粗剪刀剪去头部,使小鼠迅速死亡。
(六)测定炭末推进率
【注意事项】
1.避免被小鼠咬伤。
2.注射前将注射器中的气泡排空。
3.灌胃时动作要轻柔。
;腹腔注射尼可刹米急性毒性实验;【实验目的】
1.了解药物急性毒性实验的一般要求和观察指征。
2.学习半数致死量(LD50)或半数有效量(ED50)的实验设计。
3.掌握序贯法急性毒性实验设计和LD50的计算方法。
【实验原理】
急性毒性实验的基本要求和观察指征:观察受试物一次给予受试动物所产生的急性毒性反应和死亡情况,并计算出LD50或最大耐受量。急性毒性实验的受试动物可以选用小鼠、大鼠、兔、犬等,以小鼠最常用。观察时间一般为用药后1~2周,至少7天。实验过程中应详尽观察并记录受试动物的中毒表现。
评价药物急性毒性反应
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