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PCR扩增的原理和步骤

聚合酶链反应(polymerasechainreactionPCR)技术是20世纪80年代中期发展起来的一项基因检测即一种体外核酸扩增技术。它具有许多优点：特异性、易重复、高效性等，可以在几个小时完成过去几天或者更长时间完成的实验，因此这项技术在生物医学领域具有划时代的意义。但是，传统PCR技术有它的缺点，它通过电泳对扩增反应的最终产物进行定性分析而不能对起始模板准确定量，同时也无法对扩增反应实时检测且在实验过程中易污染而出现假阳性。人们为了寻找更为灵敏、快速、简便、高特异性的方法进行了许多探索研究，直到1996年由美国AppliedBiosystems公司推出了一种新的定量试验技术—荧光定量PCR(FlurogenicQuantitativePolymeraseChainReaction，FQ-PCR；real-timequantitativePCR,RT-qPCRorqPCR)，它是通过荧光染料或荧光标记的特异性探针，标记跟踪PCR产物进行实时监测反应，利用与之相适应的软件对产物进行分析，计算待测样品模板的初始浓度，实现了PCR从定性到定量质的跨越，具有里程碑意义。目前，此项技术已应用于干细胞研究、肿瘤学和遗传疾病研究、病原体检测和传染病研究、药物分析、药物基因组学、植物学研究和农业生物科技等多领域研究中。本文对实时荧光定量PCR的原理、分类和应用进行阐述。

一、实时荧光定量PCR技术的原理

real-timequantitativePCR技术是指在PCR反应体系中加入荧光基团，通过荧光信号不断累积而实现实时监测PCR全程，然后通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法。在荧光定量PCR技术中有2个概念比较重要。(1)荧光域值(threshold)的设定：PCR反应的前15个循环的荧光信号作为荧光本底信号，荧光域值的缺省设置是3～15个循环的荧光信号标准偏差的10倍。(2)Ct值：C代表Cycle，t代表threshold，Ct值的含义是每个反应管内的荧光信号到达设定的域值时所经历的循环数。在实时荧光定量PCR中，对全程PCR扩增过程进行实时检测，根据反应时间和荧光信号的变化可以绘制成一条曲线。一般来说，整条曲线可以分3个阶段：荧光背景信号阶段、荧光信号指数扩增阶段和平台期。在荧光背景信号阶段，扩增的荧光信号与背景无法区分，无法判断产物量的变化。在平台期，扩增产物已不再呈指数级的增加，所以反应终产物量与起始模板量之间已经不存在线性关系，通过反应终产物也算不出起始DNA拷贝数。只有在荧光产生进入指数期，PCR产物量的对数值与起始模板量之间存在线性关系，所以在PCR反应处于指数期的某一点上来检测PCR产物的量，由此来推断模板最初的含量而进行定量分析。研究表明，每个模板的Ct值与该模板的起始拷贝数的对数存在线性关系，起始拷贝数越多，Ct值越小。通过已知起始拷贝数的标准品可得到标准曲线，只要获得未知样品的Ct值，即可从标准曲线上计算出该样品的起始拷贝数。

二、实时荧光定量PCR技术荧光化学分类和定量方法

1.实时荧光定量PCR常用的荧光化学分类

实时荧光定量常用的荧光化学分类有SYBRGreenI法和TagMan探针法。SYBRGreenI是一种具有绿色激发波长的染料，最大吸收波长约为497nm，发射波长最大约为520nm，可以和所有的dsDNA双螺旋小沟区域结合。因为在游离状态下SYBRGreenI发出的荧光较弱，但是当它与双链DNA结合后，荧光就会大大增强，而且荧光信号的增加与PCR产物的增加完全同步。此法的优点是它可以监测任何dsDNA序列的扩增，检测方法较为简单，成本较低，但也正是由于荧光染料能和任何dsDNA结合，如非特异性扩增产物和引物二聚体也能与染料结合而产生荧光信号，使实验产生假阳性结果，因此其特异性不如探针法[6]。因为非特异性产物和引物二聚体的变性温度要比目标产物的低，所以可以在熔解曲线(meltingcurve)反应过程中利用软件分析仪器收集到信号进行鉴别。

TaqMan探针法是具有高度特异性的定量PCR技术。它的工作原理是在PCR反应体系中存在一对PCR引物和一条探针，探针的5′端标记有报告基团，3′端标记有荧光淬灭基团，探针只与模板特异结合，其结合位点在两条引物之间。当探针完整的时候，报告基团的荧光能量被淬灭基团吸收，所以仪器搜集不到信号，随着反应的进展，Taq酶遇到探针，利用3′→5′外切核酸酶的活性把探针切断，导致报告基团的荧光能量不能被淬灭基团吸收，产生了荧光信号，因此信号的强度就代表了模板DNA的拷贝数。

2.实时荧光定量PCR技术定量方法

在实时荧光定量PCR中模板定量有两种：绝对定量和相对