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实验二植物病原菌的组织分离
实验二植物病原菌的组织分离、培养和纯化
一、实验目的
通过本次实验学习植物病原菌分离培养及纯化的原理和常用的方
法。
二、材料和用具
玉米大斑病叶、灰斑病叶、苹果果实轮纹病及霉心病、甘薯黑斑
病等材料,5%次氯酸钠溶液(有效氯为5%,见光分解,尤其紫外光,
现用现配),75%酒精,剪刀,镊子,无菌水,灭菌培养皿,保鲜膜
封口膜,记号笔、解剖刀,75%酒精小喷壶、酒精灯,打火机、、无
菌滤纸、酒精棉、培养皿
三、分离材料的选择
为减少腐生菌的污染,分离所用的病害材料应尽可能新鲜,并且
最好在病、健交接处选材取样。病、健交接处,除材料新鲜,污染的
可能性小外,病原菌的生活力强、比较活跃,容易分离成功。
四、植物病原菌的分离方法
病原菌分离的方法因材料不同而异,植病实验室最常见的方法有
组织分离法和稀释分离法两种。
(一).组织分离法:这种方法适用于大部分病菌的分离,此法又
分为小块组织分离和大块组织分离两种方法。
1、病斑类病原菌的分离(玉米大斑病病、灰斑病及苹果果实轮纹
病的分离、甘薯黑斑病)
(1)将无菌培养皿、镊子、无菌水、无菌滤纸、75%酒精小喷壶
等放入无菌操作台,开紫外灯15分钟。期间融化培养基备用。
(2)在操作台外,用酒精消毒双手,晾干。在操作台内再次消毒
双手,晾干,将融化并冷却到50℃左右的PDA以无菌操作倒入培养皿
8—10ml,在桌面上轻轻摇动,敞开盖,制成平,凝固后待用。
(3)在操作台外,取分离材料,在病、健交界处剪取2—3毫米
长的病组织。
(4)在无菌条件下,用5%的次氯酸钠溶液消毒3-5min,(时间
长短依病组织不同而异,处理种子约5—10分钟)。
(5)用经过三次火焰灭菌的镊子将消毒的病叶移至无菌水中,漂
洗3次,在滤纸上吸干水分,移至PDA平板培养基上,每皿可放均匀
放3~4片,使材料与培养基紧密接触。倒置于25—28℃恒温箱内培
养。
(6)3~4天后,待菌落长出后挑取前缘菌丝,回接于PDA培养
基上,在25℃温箱中培养,待菌落颜色变深后,在无菌条件下镜检是
否是玉米大斑病菌、灰斑病菌、黑斑病菌、轮纹病菌,若仅有这几种
病原菌的分生孢子,则说明已获得了纯培养,否则,则需要继续转至
斜面培养基上进行纯化,直至获得纯培养。在4℃冰箱中保存。
2、种子内部病原菌的分离(小麦根腐病菌的分离)
选择典型的小麦黑胚粒3—4个,在70%的酒精中浸2—3秒钟
后,以镊子夹住投入0.1%升汞溶液中表面消毒2—3分钟,然后取出
小麦粒,以灭菌水冲洗3次,再移至已倒好的马铃薯琼脂平板培养基
上,注意要以小麦的黑胚部位着靠在培养基上,倒置在25℃温箱中培
养,待菌落长出后,挑取前缘菌丝于马铃薯斜面培养基上培养,培养
3-4天后,无菌条件下镜检是否获得纯培养。
3、病组织内部病原菌的分离(大豆枯萎病菌的分离)
取大豆枯萎病病根沾取70%酒精,用酒精火焰三次消毒后,以在
灯焰灭过菌的解剖刀切去表皮,然后切取其中小块变色的病组织,移
植于培养基表面培养,每皿放3—4块,倒置于25℃温箱中培养2—3
天。菌丝长出后转至马铃薯琼脂斜面培养基上,培养3-4天后,无菌
条件下镜检是否获得纯培养。
(二).稀释分离法:稀释分离法适用于细菌、土壤菌及产生孢子
多的真菌等病原菌的分离,本次实验以白菜软腐病作为材料进行分类
离。
白菜软腐病最易伴生腐生细菌,分离时需以病组织接种健康菜帮
上,经数次转种予以纯化,其纯化方法是将菜帮经多次换水冲洗后,
再用无菌水洗三次,切成适当大小,放在15厘米直径的培养皿中,菜
帮下
衬以吸水纸保温。用无菌解剖刀挑取病组织少许抹在菜帮的人为
伤口上,培养在20—25℃下,经1天左右呈现腐烂,如此反复转种几
次,至病斑纯净为止。
分离时,在新的水烂斑边缘挑取少量病组织在无菌水试管中配成
菌悬液,取灭菌培养皿3付,标好次序,其内各置无菌水1毫升,用
移置环移取菌悬液一环,放在第
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