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1.蛋白质提取与分离的依据
分子的形状、大小;电荷性质和多少;溶解度;吸附性质;对其他分子亲和力.
2.凝胶色谱法
(1)材料:凝胶
多孔性,多糖类化合物,如葡聚糖、琼脂糖.
(2)步骤:混合物上柱→洗脱→大分子流动快、小分子流动慢→收集大分子→收集小分子
原理:当相对分子质量不同的蛋白质通过凝胶时,相对分子质量较小的蛋白质容易进入凝胶内部
的通道,路程较长,移动速度较慢;相对分子质量较大的蛋白质无法进入凝胶内部的通道,只能在
凝胶外部移动,路程较短,移动速度较快。相对分子质量不同的蛋白质因此得以分离。
3.缓冲溶液
(1)概念:在一定范围内,能对抗外来少量强酸、强碱或稍加稀释不引起溶液pH发生明显变化的溶液。
(2)作用:能够抵制外界的酸或碱的对溶液的pH的影响,维持pH基本不变.
(3)配制:通常由1-2种缓冲剂溶解于水中配制而成.调节缓冲剂的使用比例就可以制得在不同pH
范围内使用的缓冲液。由弱酸和相应的强碱弱酸盐溶解于水中。如
HCO/NaHCO,NaHPO/NaHPO等。
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(4)本实验使用的是磷酸缓冲液(NaHPO/NaHPO),目的是利用缓冲液模拟细胞内的pH环境,保
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证血红蛋白的正常结构和功能,便于观察(红色)和科学研究(活性)。
4。电泳法
(1)概念:指带电粒子在电场作用下发生迁移的过程.
(2)原理:分离样品中各种分子带电性质的差异以及分子本身的大小,形状的不同使带电分子产生不
同的迁移速度,从而实现样品中各种分子的分离.
(3)类型:
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琼脂糖凝胶电泳法:由于琼脂糖本身不带电荷,各种分子在电场中迁移速度决定于所带电荷性质
的差异及分子的大小、形状的不同。
聚丙烯酰胺凝胶电泳法:在凝胶中加入SDS,使蛋白质解聚成单链,与各种蛋白质形成蛋白质
-SDS复合物,使其迁移速度完全取决于分子的大小。
5。实验操作
实验操作的基本步骤:样品处理、粗分离、纯化、纯度鉴定.
(一)样品处理
(1)红细胞的洗涤:
①目的:去除杂蛋白.
②为防止血液凝固,应先加入柠檬酸钠。
③所用洗涤液:是五倍体积的生理盐水(质量分数为0.9%的NaCl溶液)。
④缓慢搅拌,采用低速短时间离心。
⑤洗涤干净的标准是上清液没有黄色。
(2)血红蛋白的释放:在蒸馏水和甲苯的作用下,红细胞破裂,释放出血红蛋白。
(3)分离血红蛋白溶液:(方法)离心。
试管中的溶液分为4层,从上往下依次是:
①无色透明的甲苯层。
②白色薄层固体:脂溶性物质沉淀层。
③红色透明液体:血红蛋白溶液层。
④暗红色沉淀层:红细胞破碎物沉淀。
(4)透析:
①方法:取1mL血红蛋白溶液装入透析袋,将透析袋放入盛有300mL物质的量浓度为20
mmol/L的磷酸缓冲液(pH为7)中,透析12h。
②目的:去除样品中分子量较小的杂质.
③原理:透析袋能使小分子自由进出,而将大分子物质保留在袋内。学科&网
(二)凝胶色谱操作
(1)凝胶色谱柱的制作
制作步骤:打孔→挖穴→安管→覆网→纱包→插管.
(2)凝胶色谱柱的装填
①材料:实验所用凝胶是交联葡聚糖凝胶。
②方法:凝胶用蒸馏水充分溶胀后,配成凝胶悬浮液,一次性缓慢倒入色谱柱内。不能有气泡
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存在.然后用300mL物质的量浓度为20mmol/L的磷酸缓冲液充分洗涤平衡12h,使
胶装填紧密。
(3)样品的加入和洗脱
使吸管管口沿管壁将样品缓慢加入色谱柱内,不要破坏凝胶面。待红色的蛋白质接近色谱柱低
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