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实验四质粒DNA的提取与酶切鉴定了解质粒DNA的特性,掌握碱裂解法从大肠杆菌细胞中分离、提取质粒DNA的方法;掌握限制性内切酶的特性、酶解和琼脂糖凝胶电泳的操作方法;01通过本实验了解限制性内切酶在分子生物学研究中的意义与作用。02一.实验目的和要求二.实验原理1、碱裂解法小量制备质粒DNA:碱裂解法是基于线性大分子染色体DNA与小分子环形质粒DNA的变性复性的差异达到分离目的的,在pH12.0~12.6的碱性环境中,线型染色体DNA和环型质粒DNA氢键会发生断裂,双链解开而变性,但质粒DNA由于其闭合环型结构,氢键仅发生部分断裂,而且其互补链不完全分离;当将pH值调节到中性并在高盐浓度下,已分开的染色体DNA互补链不能复性而交联形成不溶的网状结构,通过离心,大部分染色体DNA、不稳定的大分子RNA和蛋白质-SDS复合物等一起沉淀下来而被除去,而部分变性的闭合环状的质粒DNA在中性条件下很快复性,恢复到原来的构型,呈可溶性状态保存与溶液中,离心后上清中便含有所需要的质粒DNA。限制性内切酶:又称为内切酶或限制酶,是一类能识别双链DNA分子特异性核酸序列的DNA水解酶,是体外剪切基因片段的重要工具,主要存在于原核生物中。根据限制酶的识别切割特性,催化条件及是否具有修饰酶活性可分为Ⅰ、Ⅱ、III型三大类,Ⅰ类和III类限制性内切酶,在同一蛋白分子中兼有甲基化作用及依赖ATP的限制性内切酶活性。Ⅰ类限制性内切酶结合于特定识别位点,但却随机地切割回转到被结合处的DNA。Ⅲ类限制性内切酶在识别位点上切割,然后从底物上解离下来。故Ⅰ类和Ⅲ限制酶在基因工程中基本不用,II类酶在分子克隆中使用广泛。专一性地识别并切割特定的核苷酸序列,如EcoRI识别与切割序列为5`····GAATTC····3`3`····CTTAAG····5`识别的核苷酸数目大多数为4~6个,少数识别8~13个;识别序列大多数为二重对称(回文序列),大多数酶产生的是具有凸出的粘性末端:其基本特点如下:有不同来源的限制性内切酶可以识别相同的序列,甚至切割的位点也相同,称为同裂酶或异源同工酶,如HpaII与MspI;有的识别位点不同,但对DNA切割后可产生相同的粘性末端,称为同尾酶,如BamHI与BglII。1实验材料与设备:2超净工作台、电热恒温水浴、分光光度计、恒温培养箱、恒温振荡器、移液器、微型离心管等、台式冷冻高速离心机、旋涡震荡器、电泳仪、电泳槽、紫外透射仪,凝胶成像仪、冰箱、制冰机等;35mL与0.5mLEppendorf管、Tip头、烧杯、量筒试剂:LB培养基氨苄青霉素贮存液:浓度50-100mg/mL;溶液I:50mmol/L葡萄糖,10mmol/LEDTA(pH8.0),25mmol/LTris-HCl(pH8.0);溶液II:0.2mol/LNaOH,1%SDS(现配现用);溶液III:乙酸钾溶液(3M,pH=4.8)(60mL的5mol/LKAc,11.5ml冰醋酸,28.5mLH2O);RNaseA:10mg/ml;TE缓冲液:10mmol/L,Tris-HCl,1mmol/L,EDTA,pH8.0;5×TBE缓冲液:0.45mol/LTris-硼酸,0.01mol/LEDTA,pH8.0;10×Loadingbuffer:1%SDS,0.05%溴酚兰,50%的甘油;无水乙醇;70%乙醇;标准分子量片段;核酸内切酶EcoRI(TaKaRa);EcoRI酶解缓冲液(10×bufferH);琼脂糖;溴化乙啶(EB)染色液(10mg/ml)。四、碱裂解法小量制备质粒DNA1、挑取转化筛选的带有目的质粒的大肠杆菌接种到液体培养基中,37℃震荡培养12~16小时;2、将1.5mL菌液加入Ep离心管中,12000g离心30Sec,弃上清液,在吸水纸上扣干;离心时间不能太长,以免影响下一步的菌体悬浮3、加入100?L预冷的溶液I,于涡旋振荡器上振荡悬浮细菌细胞,尽量使细胞分散;溶液I中的葡萄糖的作用是增大让一让的粘度,减少提取过程中的机械剪切力,防止染色体DNA的断裂;EDTA的作用是与二价离子(Ca2+)结合,降低DNase对DNA的降解加入200?L新配制的溶液II,盖紧管口,快速颠倒离心管,以混匀内容物,冰上放置3-5min;溶液II中的NaOH与SDS可裂解细胞,使DNA变性以及SDS使蛋白变性并形成交联
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