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DB22T 2984-2019 鹿粘膜病双抗夹心ELISA检测方法.pdfVIP

DB22T 2984-2019 鹿粘膜病双抗夹心ELISA检测方法.pdf

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ICS11.220

B41

DB22

吉林省地方标准

DB22/T2984—2019

鹿粘膜病双抗夹心ELISA检测方法

DoubleantibodysandwichELISAmethodforthedetectionofdeermucosaldisease

2019-05-27发布2019-06-17实施

吉林省市场监督管理厅发布

DB22/T2984—2019

前言

本标准按照GB/T1.1-2009和GB/T20001.4-2015给出的规则起草。

本本标准由吉林省畜牧业管理局提出并归口。

本标准起草单位:长春市乾艺生物科技研究所、长春市农业科学院。

本标准主要起草人:田来明、赵春梅、张宇、李男、田桂华、申雨弘、崔鹤馨、权心娇、胡桂英、

付晓霞、王雨千。

I

DB22/T2984—2019

鹿粘膜病双抗夹心ELISA检测方法

警示——使用本标准的人员应有正规实验室工作的实践经验。本标准并未指出所有可能的安全问题。

使用者有责任采取适当的安全和健康措施,具体防护措施及要求按照GB19489执行。

1范围

本标准规定了鹿粘膜病双抗夹心ELISA检测方法的术语和定义、试剂、仪器设备、样品处理、操作

步骤和结果判定。

本标准适用于鹿粘膜病病毒的检测。

2规范性引用文件

下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文

件。凡是不注日期的引用文件,其必威体育精装版版本(包括所有的修改单)适用于本文件。

GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法

GB/T19489实验室生物安全通用要求

3术语和定义

下列术语和定义适用于本文件。

3.1

鹿粘膜病mucosaldisease

由病毒性腹泻病毒(mucosaldiseasevirus,MDV)引起的鹿传染病,可引起鹿呈多临床表现,

主要表现为腹泻、母鹿流产、不孕,产死胎、木乃伊胎或畸形胎等。

4试剂

除有特殊说明外,所有实验用试剂均为分析纯,实验用水符合GB/T6682中一级水的要求。

4.1PBS,见表A.1。

4.2包被液,见表A.2。

4.3洗涤液,见表A.3。

4.4封闭液,见表A.4。

4.5pH5.0磷酸盐-柠檬酸缓冲液,见表A.5。

4.6底物溶液(OPD-H2O2),见表A.6。

4.7终止液,见表A.7。

4.8标准阳性,MDVNADL国际标准株用牛肾继代细胞MDBK株培养增值,经反复冻融后制备。

4.9标准阴性,pH7.4PBS。

4.10MDV免疫球蛋白,见附录B。

1

DB22/T2984—2019

4.11MDV酶标抗体,见附录C。

5仪器设备

5.1离心机,最高转速15000r/min。

5.2恒温培养箱,温度均匀度≤±1(37℃时)

5.3酶联免疫检测仪,全波长酶标仪。

5.4紫外分光光度计,200nm~1000nm。

6样品处理

6.1样品采集

选择新鲜鹿粪3g~5g装入洁净的食品塑料袋内,用封口机封口或结扎紧袋口后立即放入盛有

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