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关于菌落总数的测定第1页,共21页,星期日,2025年,2月5日一、菌落总数食品检样经过处理,在一定条件下(如培养基、培养温度和培养时间等)培养后,所得每g(mL)检样中形成的微生物菌落总数。第2页,共21页,星期日,2025年,2月5日二、菌落总数测定的意义1、判定食品被细菌污染的程度及卫生质量。2、预测食品存用的期限长短。3、了解细菌在食品中的繁殖动态。第3页,共21页,星期日,2025年,2月5日三、设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:恒温培养箱:36℃±1℃,30℃±1℃。冰箱:2℃~5℃。恒温水浴箱:46℃±1℃。天平:感量为0.1g。均质器。振荡器。无菌吸管:1mL(具0.01mL刻度)、10mL(具0.1mL刻度)或微量移液器及吸头。无菌锥形瓶:容量250mL、500mL。无菌培养皿:直径90mm。pH计或pH比色管或精密pH试纸。放大镜或/和菌落计数器。第4页,共21页,星期日,2025年,2月5日四、平板倾注法测定菌落总数检验步骤(程序):检样→稀释处理→做平板→培养→菌落计数→报告结果第5页,共21页,星期日,2025年,2月5日(一)、样品的稀释及做平板1、固体和半固体样品:称取25g样品置盛有225mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内,8000r/min~10000r/min均质1min~2min,或放入盛有225mL稀释液的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1min~2min,制成1:10的样品匀液。第6页,共21页,星期日,2025年,2月5日2、液体样品:以无菌吸管吸取25mL样品置盛有225mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶(瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)中,充分混匀,制成1:10的样品匀液。(一)、样品的稀释及做平板第7页,共21页,星期日,2025年,2月5日3、用1mL无菌吸管或微量移液器吸取1:10样品匀液1mL,沿管壁缓慢注于盛有9mL稀释液的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管或换用1支无菌吸管反复吹打使其混合均匀,制成1:100的样品匀液。4、上述操作程序,制备10倍系列稀释样品匀液。每递增稀释一次,换用1次1mL无菌吸管或吸头。(一)、样品的稀释及做平板(一)、样品的稀释及做平板第8页,共21页,星期日,2025年,2月5日5、根据对样品污染状况的估计,选择2个~3个适宜稀释度的样品匀液(液体样品可包括原液),在进行10倍递增稀释时,吸取1mL样品匀液于无菌平皿内,每个稀释度做两个平皿。同时,分别吸取1mL空白稀释液加入两个无菌平皿内作空白对照。(一)、样品的稀释及做平板(一)、样品的稀释及做平板第9页,共21页,星期日,2025年,2月5日6、及时将15mL~20mL冷却至46℃的平板计数琼脂培养基(可放置于46℃±1℃恒温水浴箱中保温)倾注平皿,并转动平皿使其混合均匀。(一)、样品的稀释及做平板(一)、样品的稀释及做平板第10页,共21页,星期日,2025年,2月5日1ml1ml1ml1:101:10001:1001:100001ml1ml1ml1ml加入46℃营养琼脂12~15ml25g/ml样品生理盐水第11页,共21页,星期日,2025年,2月5日注意:检样从开始稀释到倾注最后一个平皿所用时间不宜超过20min,以防止细菌有所死亡或繁殖。第12页,共21页,星期日,2025年,2月5日(二)培养1、待琼脂凝固后,将平板翻转,36℃±1℃培养48h±2h。水产品30℃±1℃培养72h±3h。2、如果样品中可能含有在琼脂培养基表面弥漫生长的菌落时,可在凝固后的琼脂表面覆盖一薄层3、琼脂培养基(约4mL),凝固后翻转平板,按1、条件进行培养。第13页,共21页,星期日,2025年,2月5日(三)计数和报告到达规定培养时间,应立即计数。如果不能立即计数,应将平板放置于0-4℃,但不得超过24h。第14页,共21页,星期日,2025年,2月5日1、菌落的选择(1)、单个菌做一个菌落计(2)、呈链状生长的菌落之间无任何明显界限,作为一个菌落计,如存在有几条不同来源的链,则每条链均应按一个菌落计算。(3)、如片状菌落不到平板一半,而另一半又分布均匀,则可以半个平板的菌落数乘2代表全平板的菌落数。第15页,共21页,星期日,2025年,2月5日
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