研究生基本实验技能培训.pptVIP

研究生科研实验教学基地建设

基本实验技能培训

首都医科大学附属北京朝阳医院基础医学研究中心·梁燕

主要内容1.DNA的提取DNA提取原理DNA提取方法操作注意事项2.PCRPCR体系和循环条件PCR操作步骤操作注意事项3.琼脂糖凝胶电泳凝胶电泳原理电泳方法步骤操作注意事项1.DNA的提取DNA提取原理DNA提取方法操作注意事项1.1基因组DNA提取原理既要将DNA与蛋白质、脂类和糖类等分离，又要保持DNA分子的完整。台式离心机、恒温水浴锅、紫外分光光度计、移液器、离心管（灭菌）、吸头（灭菌）、镊子（灭菌）、离心管架仪器准备：试剂盒、无水乙醇等试剂准备：01021.2基因组DNA提取试剂盒试剂盒内容向52ml的缓冲液GD中加入68ml无水乙醇，并标记；向50ml的缓冲液PW中加入200ml无水乙醇，并标记；加入200ul缓冲液GB，充分颠倒混匀，56℃放置10分钟，期间颠倒混匀数次，溶液应变清亮。将吸附柱CB3放入收集管中准备好，将上述溶液移到吸附柱CB3中，12000rpm离心30秒，倒掉收集管中的废液，将吸附柱放回收集管；如果步骤5的溶液不能一次加完，可以再次重复步骤6；取200ul全血，加入20ul的蛋白酶K溶液，混匀；加入200ul无水乙醇，充分颠倒混匀，此时可能会出现絮状沉淀。向吸附柱中加500ul的缓冲液GD，12000rpm离心30秒，倒掉收集管中的废液，将吸附柱放回收集管；操作步骤（重点）操作步骤（重点）7.向吸附柱中加入700ul漂洗液PW，12000rpm离心30秒，倒掉收集管中的废液，将吸附柱放回收集管；向吸附柱中加入500ul漂洗液PW，12000rpm离心30秒，倒掉收集管中的废液，将吸附柱放回收集管；将吸附柱和收集管再次离心，12000rpm离心2分钟，将吸附柱至于室温放置数分钟；将吸附柱转入一个干净的离心管中，向吸附膜中间位置悬空滴加50-200ul洗脱缓冲液TB，室温放置2-5分钟，12000rpm离心2分钟，将溶液收集到离心管中；测OD值，计算DNA浓度和纯度；或电泳估计DNA浓度。01020304DNA浓度(ug/ul)=OD260×50×稀释倍数/1000OD260=0.1稀释倍数=250DNA浓度=0.1×50×250/1000=1.25ug/ul计算公式：使用台式离心机，室温离心01避免样品反复冻融56℃水浴摇匀可消除GB中的沉淀02操作注意事项2.PCRPCR体系和循环条件PCR操作步骤操作注意事项仪器准备：PCR仪，微型离心机、移液器、离心管（灭菌）、吸头（灭菌）、镊子（灭菌）、离心管架试剂准备：ddH2O,PCRBuffer，dNTP，引物，PCR聚合酶，DNA模板2.1PCR体系和循环条件（重点）BclIPCRTotalvolume25ul*2ddH2O16.5ul33ul10×Buffer2.5ul5uldNTP(25mM)2ul4ulPrimerF(10mM)1ul2ulPrimerR(10mM)1ul2ulExTaq(1U/ul)1ul2ulSum24ul48ul48/2=24ulTemplateDNA（0.1ug/ul)1ul1ul95℃，30s（预变性）60℃，30s72℃，30s95℃，30s72℃，30s（后延伸）30cycles0102PCR操作步骤（重点）计算好所需扩增的PCR体系；打开PCR仪预热，设置PCR循环条件；准备试剂，融化，离心，置于冰上，备用；按顺序加样，混匀，离心，分装；加入模板DNA，混匀，离心；放入PCR仪，Start。01避免试剂反复冻融02计算总量，顺序加样03更换吸头，避免污染2.3PCR操作注意事项01凝胶电泳原理02电泳方法步骤03操作注意事项3.琼脂糖凝胶电泳